第一篇:檢驗標本采集處理
一﹑臨床常用檢驗項目的標本采集和處理
(一)血常規(guī)檢驗標本
一般用EDTA-2K(EDTA-K2-2H2O)1.5~2.2mg/ml抗凝(EDTA抗凝管)采血。采血注意事項為:
1.采血后立即上下顛倒混勻(5-10次,不可用力震蕩);
2.應按抗凝管刻度準確采血至2ml;3.采血后應盡快送檢(需顯微鏡觀察形態(tài)的標本采血后 應及時推片固定,因為超過2h WBC形態(tài)會發(fā)生改變)。
(二)紅細胞沉降率(血沉,ESR)測定標本
靜脈采集枸櫞酸鈉(109mmol/L,即32.06g/L)抗凝血(枸櫞酸鈉抗凝管采血)。注意事項:
1.采血后立即上下顛倒混合5-10次;
2.單獨采1管血,準確采血至2ml(抗凝劑:全血 = 0.4 :1.6); 3.采血后應盡快送檢(必須2h內檢測)。
(三)凝血檢測(PT、APTT、TT、FBG、DD)標本
靜脈采集抗凝血(最好真空負壓系統(tǒng)采血),抗凝劑用枸櫞酸鈉(109mmol/L,即32.06g/L,抗凝劑:全血 = 0.2:1.8)。采血注意事項:
1.空腹采靜脈血(餐后脂血影響檢測結果,使因子Ⅶ活化,導致PT延長);
2.采血時患者應保持平靜狀態(tài)30min以上(劇烈活動可使因子Ⅷ活化,APTT明顯縮短); 3.應單獨1管血;
4.必須準確采血至刻度線2.0ml;
5.采血后應立即上下顛倒混勻5-10次,不可有凝塊; 6.采血后應盡快送檢(必須2h內檢測)。
(四)血型 與 血交叉標本
為EDTA-2K抗凝血。采血注意事項:
1.最好血型與血交叉各采1管血(要求保留血樣); 2.采血量分別為1.0ml和1.0~2.0ml; 3.采血后立即上下顛倒混勻(5~10次)。
(五)尿液常規(guī)檢查標本
1.尿液常規(guī)檢查標本應按以下原則進行采集:
(1)新鮮晨尿最佳,門診病人亦可留隨機尿;
(2)尿液采集于干凈帶蓋容器中,不可使用未經(jīng)洗滌的裝藥物或試劑的器皿;
(3)避免混有經(jīng)血、白帶、精液和糞便;
(4)尿液標本冰箱可保存6~8h,但細胞等有型成分會有破壞,會有結晶析出;
(5)尿液成分定量檢查應留取24h防腐混合尿100~200ml(須記取24h尿液總量);
(6)根據(jù)不同檢測目的選擇不同的防腐劑:臨床最多用的尿液防腐劑為:①甲醛(formalin),用于尿液有形成分檢查,濃度為400mg/L尿液即40%;②甲苯(toluene),常用于尿糖和尿蛋白等化學成分的定性或定量檢查,5-20ml/L尿液;③濃鹽(hydrochloric acid),用于定量測定尿17-羥、17-酮、腎上腺素、兒茶酚胺和尿鈣等,濃度為1ml/L尿液。
2.尿液常規(guī)檢查標本采集方法:
(1)晨尿最好(安靜狀態(tài)下留取清晨第一次尿,濃縮,無其他影響);
(2)隨機尿較常用(隨時留尿,適用于門診和急診病人,結果易受多種因素影響);
(3)清潔尿(中段尿、導管尿、膀胱穿刺尿,用于病原微生物學培養(yǎng)、堅定和藥敏);
(4)24h尿(用于尿液成分24h定量檢查分析,一定要教會病人留取24h尿正確方法)。
(5)3h、12h等計時尿和餐后尿等特殊實驗尿,則應按醫(yī)囑要求進行留尿。
(六)糞便常規(guī)檢查標本
1.一般應為新鮮的自然排出的糞便3~5g,必要時可肛拭子采?。? 2.送檢糞便應盛于潔凈帶蓋的塑料盒中送檢,要做好標記;
3.要選取糞便的膿、血、黏液等異常成分進行檢查,表面無異常時應從糞便表面、深處及糞端多處取材;
4.檢查蟯蟲卵需用透明塑料薄膜于半夜12pm或早晨排便前,于肛門周圍皺襞處拭取標本,并立即送檢;
5.檢查血吸蟲卵時應取黏液、膿、血部分,如須孵化毛蚴應留取不少于30g的糞便,并盡快送檢,必要時留取整份糞便送檢。
6.檢查痢疾阿米巴滋養(yǎng)體時,應床邊留取新排出的糞便,從膿血和稀軟部分取材,并立即保溫送實驗室,并且實驗室接受標本后應立即進行檢查。
7.做便隱血試驗時,應囑病人檢查前3d內禁食肉類、含動物血的食物及某些蔬菜,禁服鐵劑和維生素C等對實驗有干擾作用的藥物。
(七)漿膜腔積液檢查標本
(1)漿膜腔積液標本一般由醫(yī)生無菌穿刺采取;
(2)送檢標本量:理學檢查、化學檢查、細胞學檢查各留取2ml;細菌學檢查用 無菌管采集標本,厭氧菌培養(yǎng)留?。眒l,結核菌檢查留?。保癿l。
(3)標本采集后必須立即送檢(否則可出現(xiàn)細胞變性,標本凝集,細菌溶解);
(4)用于細胞學檢查時,可在標本中加適量EDTA鹽抗凝,但還須留?。惫懿患涌鼓齽┑臉吮居糜谟^察積液的凝固性;化學檢查標本宜用肝素抗凝。
(八)臨床化學檢驗標本
臨床化學檢驗多用非抗凝血標本,有條件應使用真空負壓采血管。臨床化學檢驗血標本采集主要注意事項是:
1.多項化學檢測一般可采1管血;
2.采血量視檢查項目多少不同而異,單通常為4.0~5.0ml; 3.如果檢測項目不是很多,生化和免疫也可以采1管血;
4.多項檢測同時采血時應按下列順序采血:①血培養(yǎng);②無添加劑管;③凝血管;④有添加劑管的順序為:a櫞酸鹽管;b肝素管;cEDTA管;d草酸鹽/氟化鈉管。
5.不論是抗凝血還是非抗凝血,為了縮短血清或血漿與血細胞的接觸時間,以避免由此而影響結果的準確性,血液標本收集后,都必須盡可能早地將血清或血漿從全血中分離出來。從血液標本采集開始,必須在2h內將全血處理為血清或血漿。
(1)血清(非抗凝血):采血后標本必須顛倒混合5~10 次,22~25oC(室溫)15~30min后可自行(自發(fā))完全凝固,禁用木棍和玻棒等剝離凝塊;冷藏標本凝集較慢,加促凝劑時凝集加快。
(2)血漿(抗凝血):應采用抗凝管采血,采血后立即顛倒混合5~10次,采血后數(shù)min內可離心分離血漿。
(3)冷藏標本:用于穩(wěn)定血液中溫度依賴性成分的(抑制細胞代謝),標本于2-8oC冷藏(標本采集后立即置冰屑或冰水混合物中,冷藏必須充分);標本需冷藏的測定項目有:兒茶酚胺、胃泌素、甲旁素、PH/血氣、NH3、乳酸、丙酮酸等。,全血標本一般不冷藏,血鉀測定標本冷藏不得>2h(4)代謝抑制劑和防腐劑的應用:用于抑制細胞代謝。血標本中加入氟化鈉后,血細胞未分離情況下血標本中Glu,22~25oC穩(wěn)定24h,2~8oC穩(wěn)定48h;氟化鈉不適用于新生兒及兒童的Glu測定(因兒童PCV高,細胞糖酵解難以控制);氟化鈉-麝香草酚混合劑不適合酶學檢測(因氟化鈉-麝香草酚混合劑能抑制酶活性);甲醛—草酸鉀抗凝保存劑不適用于血糖測定。
(5)實驗室離心標本的準備:不主張用小棍強行剝離凝血塊(誘發(fā)溶血);必須剝離時應動作輕柔;真空采血管應一直保持封閉垂直位置直到離心取出血清或血漿。
(6)關于標本離心(指標本處于離心機里的一段時間)
①離心時間和相對離心力:離心時間為5~10min;相對離心力(RCF)為1000~1200×g;
②溫度控制離心:離心時產(chǎn)熱,不利于分析物穩(wěn)定。溫度依賴性分析物(ACTH﹑環(huán)腺苷酸﹑兒茶酚胺等)離心溫度應控制在4oC;無特殊溫度要求的分析物離心溫度在20~22oC;冷藏運送標本應利用溫度控制離心機離心。
③再離心:最好一次完成標本離心。普通采血管二次離心時必須在首次離心后短時間內完成;帶分離膠的采血管不可以二次離心。
(7)離心后標本處理(指標本離心后和用于檢測的血清或血漿被取出 一定量之前)(1)血清/血漿與接觸的細胞/凝塊應于采集后2h內盡快分離;(2)分離出的血清或血漿的儲存:
①8h內可以儲藏于22oC,8h以上儲藏于2~8oC 48h以上儲藏于-20oC;
② 標本不可反復凍融(只能一次,且不可儲藏于無霜冰箱);
③分離膠上面的血清或血漿,可保存2-5天;
④用非凝膠分離物質時,離心后必須立即移開血清或血漿;
⑤ 血清或血漿必須密閉保存(置于帶塞或封口的試管中)。
(九)血氣分析標本
血氣分析標本為動脈(股﹑肱﹑撓動脈)抗凝全血,抗凝劑為肝素鈉(0.05mg/ml,即1000u/ml,用9g/L的生理鹽水配制)。標本采集注意事項為: 1.采血一定要用厭氧技術(讓血液盡量少的與空氣接觸);
2.采血前先吸入足夠量液體肝素抗凝劑于注射器內,使其盡可能濕潤注射器內壁,然后排出液體肝素,留下注射器死區(qū)內液體肝素約0.1ml即可; 3.采血量0.5~1.0ml(最好2.0ml);
4.抽出的血液不能有氣泡,如有氣泡應立即排出;
5.標本采好后立即封閉注射器針頭,用兩手挫動注射器針筒使標本混勻后立即送檢。
(十)微生物學檢驗標本
微生物學檢驗標本的正確采集﹑運送及處理,與細菌的培養(yǎng)﹑鑒定結果有十分密切的關系;對可疑烈性呼吸道傳染?。ㄈ鏢ARS ﹑炭疽﹑肺鼠疫等)患者采集標本時,必須按國家規(guī)范化要求嚴格注意生物安全;醫(yī)生﹑護士﹑檢驗人員均應重視微生物學檢驗標本正確采集的有關問題,并有責任向患者及其家屬進行正確采集標本的宣傳和指導。1.微生物學檢驗標本采集、運送、驗收和處理注意事項
(1)標本采集
1)申請單標記必須清楚(姓名、性別、年齡、病例號、臨床診斷、標本來源、采集時間、檢查項目、抗生素應用情況等),以便實驗室能夠合理選擇培養(yǎng)環(huán)境和培養(yǎng)基; 2)盡量在抗生素應用前采集標本,以避免漏檢和提高陽性檢出率; 3)標本采集應嚴格執(zhí)行無菌操作;
4)咽拭、肛拭、傷口拭子等拭子標本,應插入運送培養(yǎng)基送檢;
5)痰、尿液、傷口拭子等混有正常菌群的標本,不可放入肉湯培養(yǎng)基內送檢; 6)采集標本的容器必須經(jīng)滅菌處理,但不可用消毒劑。
(2)標本運送
1)標本采集后應盡快送到微生物實驗室;
2)標本采集后在室溫下超過2h未送達實驗室,可視為不合格標本。
(3)標本驗收
1)實驗室只能接受和處理合格標本;
2)實驗室對不合格標本退回必須說明原因,并應及時與臨床聯(lián)
(4)處理
根據(jù)檢驗目的結合臨床資料選擇合適的培養(yǎng)基接種標本;混有正常菌群的標本應做定量細菌培養(yǎng);不能精確定量或常規(guī)定量操作較困難的痰、傷口拭子等標本,應分離出優(yōu)勢菌做細菌鑒定和藥敏實驗,同時注明細菌量化指標;抗菌藥物治療的標本,必要時應加入某些物質以中和藥物對細菌的抑制作用。2.微生物學檢驗標本采集和處理
(1)尿液標本采集和處理 通常留取晨起第一次尿液(此時尿液在膀胱內儲存4h以上);尿液采集后要及時送檢,并保證2h內接種;不能及時送檢和接種時,尿液應置4-8℃冰箱保存;冷藏標本應于8h內接種;懷疑沙門氏菌感染時,應于發(fā)病2w左右采集尿液,懷疑鉤端螺旋體感染時,應于發(fā)病后2w采集尿液,上述時間此時陽性率高。尿液微生物學檢驗標本采集方法如下。1)中段尿采集法:成年男性和女性分別用肥皂水清洗尿道口和外陰部,再用滅菌水沖洗尿道口,然后排尿棄去前段尿液,于帶蓋的無菌盛器中留取中段尿液5~10ml 2)導尿法:用導尿管導取10~15ml尿液,置滅菌容器中送檢;長期留置導尿管者應更換新導尿管留尿;留置導尿時,用無菌消毒法消毒導尿管外部及導尿管口,用無菌注射器通過導尿管抽取尿液送檢(不可采集尿液收集袋中的尿液送檢);
3)集尿法:懷疑結核分枝桿菌感染時,于清潔盛器中留取24h尿液,取其沉渣10~15ml送檢;
4)恥骨上膀胱穿刺法:培養(yǎng)結果與臨床病情矛盾時可采用此法,一般較少應用; 5)腎盂尿采集法:必須由臨床醫(yī)生采集。
(2)糞便標本采集和處理 1)采集時間:
①腹瀉患者于急性期,盡量在用藥前采集糞便;
②傷寒患者于發(fā)病2w以后采集糞便;
③懷疑霍亂時立即采集糞便送檢。2)采集方法:
① 自然排便:取新鮮糞便的黏液、膿血、或絮狀物等有意義成分,2-3g或1-2ml,盛無菌容器內或置于保存液或增菌液內送檢;
②直腸拭子:用于難以獲得糞便或排便困難的患者和嬰幼兒,標本采集后插入滅菌試管內送檢。
(3)痰及下呼吸道標本采集和處理 1)自然咳痰法:
① 晨痰為佳;
② 先冷開水漱口清潔口腔和牙齒;
③ 再用力咳出呼吸道深部的痰;
④ 痰量不得少于1ml;
⑤痰咳出困難時可先霧化吸入NaCl溶液(100g/L,加溫到45℃)使痰容易咳出。2)小兒取痰法:用彎壓舌板向后壓舌,將拭子深入咽部,小兒因壓舌板刺激引起咳嗽,噴出的肺或氣管分泌物粘在拭子上可送檢。
3)支氣管鏡、支氣管穿刺、支氣管肺胞灌洗等采集法:此采集方法必須由醫(yī)生操作。
(4)血液及骨髓培養(yǎng)標本
1)抗生素治療前,嚴格無菌靜脈采血8~10ml(兒童1~4ml);
2)無菌注入專用培養(yǎng)瓶(成人、兒童、需氧菌、厭氧菌、L型菌不同培養(yǎng)瓶)中送檢; 3)如已用抗生素不能停用時,可于48h內分別于下次用抗生素之前,采取6份血液標本送檢;
4)必要時可需氧菌、厭氧菌(占10%)和L型菌同時培養(yǎng);
5)疑為心內膜炎時,為提高陽性檢出率,可酌情不同部位、不同時間,多次采血或動脈采血進行培養(yǎng);
6)必要時可取骨髓1~2ml,無菌注入專用培養(yǎng)瓶中送檢(5)腦脊液培養(yǎng)標本
1)采集時間:懷疑腦膜炎時應立即采集腦脊液,最是在應用抗生素之前采集腦脊液。2)采集方法:無菌腰穿采集腦脊液3~5ml,分裝到3個無菌小瓶中(各1~2ml)。用于細菌和病毒檢測時腦脊液量不少于1ml;用于真菌和抗酸桿菌檢測腦脊液量不少于2ml。
(6)穿刺液培養(yǎng)標本包括胸水、腹水、心包液、關節(jié)液、鞘膜液等穿刺液培養(yǎng)標本。1)采集時間:一般在用抗生素等抗菌藥物治療之前,或在停止使用抗菌藥物之后2-3d采集標本。2)采集方法:
①無菌操作穿刺抽取標本或外科手術采集標本;
② 標本采集量應>1ml(結核分支桿菌培養(yǎng)時應為1~5ml);
③ 標本采集后注入無菌小瓶或無菌試管中送檢;
④可在盛器中先加入滅菌肝素然后再加入穿刺液,以防止穿刺液凝固(0.5ml肝素可抗凝5ml標本)
(7)胃液及膽汁培養(yǎng)標本
抽取空腹胃液5ml,置無菌管內送檢;膽汁培養(yǎng)標本由十二指腸引流法或膽囊穿刺法或手術中留取膽汁,采集膽汁量為5ml,置無菌管內送檢;胃液和膽汁采集后必須立即送檢。
(8)膿汁和病灶分泌物培養(yǎng)標本采集前局部消毒,然后無菌采取膿汁或病灶分泌物或組織。標本采集后立即置無菌管內送檢。
(9)眼.耳.鼻.咽拭子培養(yǎng)標本用拭子常規(guī)采集各種標本。標本采集過程中應注意避免被黏膜上的正常菌群污染,標本采集后連同拭子一起置無菌管內送檢。
(10)泌尿生殖道培養(yǎng)標本
1)尿道分泌物:清洗尿道口采取尿道口溢出的膿性等分泌物,或用無菌拭子插入尿道2~4cm處輕輕轉動后取出,置無菌試管中送檢。
2)陰道、宮頸分泌物:通過陰道擴張器,用滅菌拭子采取陰道口或宮頸管1~2cm處分泌物,置無菌試管中送檢。
3)宮腔分泌物:在必要時用外套保護膜的滅菌導管抽取。
4)前列腺液:清洗尿道口沖洗膀胱后用前列腺按摩法采取前列腺液送檢。
5)精液:受檢者應5d未排精,清洗尿道口后手淫或體外排精法,射精于無菌容器內送檢。
6)潰瘍分泌物:滅菌生理鹽水溶液清洗患處,用無菌拭子取其邊緣或基底部的分泌物,置無菌試管中送檢。(11)燒傷感染培養(yǎng)標本
燒傷12h后用無菌棉拭子無菌操做采集標本;要注意從多個創(chuàng)面取樣;燒傷嚴重感染時易發(fā)生敗血癥,創(chuàng)面取樣的同時應該采集血樣送做血培養(yǎng)(最好同時做需氧菌培養(yǎng)和厭氧菌培養(yǎng))。
(12)厭氧菌感染培養(yǎng)標本 1)標本采集
①要注意避免標本污染和與空氣接觸,嚴格遵守無菌操作;
②用注射器抽取胸水、腹水、心包液、關節(jié)液、膽汁、腦脊液或無菌手術抽出膿液;
③抽出液體標本后,要盡快排除注射器內的空氣。2)標本運送
① 標本采集后不得冰箱儲存,必須盡快(半小時內)送實驗室;
② 運送方法:
a注射器運送(標本抽取后盡快排除空氣)或接種到專門的運送培養(yǎng)基中直接運送; b含運送培養(yǎng)基的無氧小瓶運送; c厭氧罐運送(組織塊);
d 大量液體標本運送時要裝滿標本瓶并立即驅氧,加蓋運送; e一般不采用棉拭子法。(13)真菌感染培養(yǎng)標本 1)淺部真菌感染標本采集
① 皮膚:常規(guī)消毒皮膚,從皮膚癬菌皮損邊緣刮取鱗屑,置無菌平皿內送檢;皮膚潰瘍則采集病損邊緣膿汁或組織;
② 指(趾)指甲:消毒指(趾)指甲并去掉其表面部分,取可疑病變部分,用刀片修成小薄片5~6片,置無菌容器內送檢;
③毛發(fā):采集根部斷折處,至少5~6根送檢。2)深部真菌感染標本采集
① 血液:無菌采血8~10ml,注入未用過抗生素的或可中和抗生素的血培養(yǎng)瓶中,立刻送檢;如不能立刻送檢時血培養(yǎng)瓶應放室溫,但不可超過8~9h;
② 腦脊液:采樣量不少于3~5ml,分別注入兩支無菌試管中送檢(一管做真菌培養(yǎng)和墨汁染色;一管測隱球菌抗原和其他培養(yǎng));③呼吸道及泌尿生殖道深部真菌感染標本采集同一般菌培養(yǎng)標本。
(14)病毒感染標本
1)標本采集原則:根據(jù)不同檢查目的采集不同的標本,見表1。盡量于疾病早期采集標本;尸檢標本應在患者死亡后6h內采集標本。2)標本采集方法:
① 呼吸道病毒感染標本用咽拭子采集;讓患者先咳嗽,再口服0.5%乳蛋白水解物15ml,反復含漱3~4次后吐到容器中立即送檢;兒童常應用無菌棉拭子,先沾好0.5%乳蛋白水解物,再去涂拭扁桃體周圍組織,并立即泡在0.5%乳蛋白水解物中,立即送檢;
②乙腦病毒需采集血清或血漿,置無軍菌容器中盡快送檢;
③ 尿液則取其中段尿立即送檢(否則置4℃冰箱12h內接種);
④腸道病毒和柯薩奇病毒則采集新鮮糞便,盡快送檢。
3)標本運送及保存:多數(shù)病毒對熱不穩(wěn)定,標本采集后應立即送檢接種;如48h內接種,須置4℃冰箱保存;空運標本須置冰壺中48h內送到實驗室并接種。
第二篇:檢驗 標本 采集 手冊
檢驗 標本 采集 手冊
吉林大學第一醫(yī)院檢驗科 2005 年 11 月
重要警示語
將每一份標本都看作是無法重新獲得、將每一份標本都看作是無法重新獲得、唯一的標 1 本,必須小心地:采集、保存、轉運。必須小心地:采集、保存、轉運。醫(yī)學實驗室都接受 ISO 15189:2003 的認可 CAP 文件分析前程序,ISO/IEC15189 文件定義為:按照時 間順序,從臨床醫(yī)生開出醫(yī)囑開始,到分析檢驗程序 時終止檢測結果報告發(fā)回的步驟,包括:檢驗申請、患者準備、原始樣品采集、運送到實驗室完成分析前 程序的主體: 大部分工作都是醫(yī)生、護士、運輸人員、檢驗人 員共同協(xié)調,在實驗室檢測以外的空間完成的。分析前質量管理最易出現(xiàn)問題: 臨床反饋不滿意的檢驗結果,60%報告最終可溯源 到標本質量不合要求??煽康臋z驗結果,第一個環(huán)節(jié)必須依賴于標本 的高質量。要獲得高質量的標本: 臨床醫(yī)生:應主動明確地告之患者如何配合好 護理人員和檢驗人員:采集好、檢測好標本 運輸人員:及時快速規(guī)范轉運好標本 在實驗室進行檢測、檢驗結果審核、報告數(shù)據(jù)發(fā)回。
一、采集標本前質量保證、對策 2
(一)加強溝通,合理選項 醫(yī)生應認真、完整地填寫檢驗申請單,講清每項填寫的意。特別是: 患者服藥史、特殊病理變化、留取標本、送檢標本的時間等。
(二)患者準備,至關重要 醫(yī)護人員應了解在標本采集前影響結果的非病理性因素(藥物、飲食、運動、治療、生理變化、生活環(huán)境和習性、標本采集時間)正確指導患者,采取切實措 施,規(guī)范采集標本前患者的一切行為,保證采集的標本符合疾病的實際情況,留 取合格的標本。應告之患者:試驗名稱、所需標本類型、為什么要檢測、檢測報 告時間、如何獲得結果。
(三)采集前準備: 條碼生成與粘貼 足夠合格的采血人員 標準化的采血程序手冊 合格的采血器材 1 二.標本基本類別血液.全血、血漿、血清 尿液 便 腦脊液 心包、胸腔和腹腔積液 關節(jié)積液 羊水 胃及十二指腸液 前列腺液和精液 痰 其他(包括乳汁、淚液、房水、唾液、膿液和各種分泌物等)各種穿刺物 3 [血液標本的采集] 一.血液標本基本要求 保持標本完整性:控制各種干擾因素 保持標本新鮮:最好的尺度是時間 拒絕不合格血標本:高脂肪、溶血、凝固、二.標本采集的時間
(一)隨機和急診標本 隨機和急診標本是指無時間限定或無法規(guī)定時而必須采集的血和尿標本,一 般無法讓患者進行準備。此類標本主要是門診、急診和搶救病人必須做的一些檢 查標本,或在體內代謝相對較穩(wěn)定的檢查物質,或受體內外干擾較小的檢查物質。凡此類標本在送檢時應加以注明,評價檢驗結果時應注意晝夜節(jié)律影響。便于分 析檢查結果時參考。
(二)空腹標本 空腹標本一般指進食 8h 后(但不能超過 12h,禁食時間過長可引起部分指標 異常;如補體 C3、轉鐵蛋白等。)采集的血和尿標本,住院病人多在清晨,此類 標本常用于臨床生化定量檢查。因為標本是在空腹和安靜時采集的,所以受飲食 質、量以及日間生活、生理活動的影響較小。對病人來講,若多次檢查同一項目,也便于比較、對照。測定血肌酑時還應禁肉食 3 天,且不能飲咖啡、茶等。乳糜 血患者檢測血脂應素食 3 天后。
(三)指定時間標本 指定時間標本多屬功能試驗采集的各種標本,因試驗目的不同,采集標本的 時間各有不同,必須按試驗要求采集,如葡萄糖耐量試驗等。三.血液標本檢驗結果的干擾因素
(一)脂血 血液中脂蛋白成分的增加常會導致血清、血漿渾濁或奶酪狀,通常稱之為脂 血。血清或血漿渾濁本身具有一定的臨床意義,實驗室報告這一結果,同時血清 渾濁可導致許多指標出現(xiàn)假性升高(如總蛋白)。另處,由于指質可以置換水,經(jīng)常導致血 K、Na 的的濃度在電極法測定時比火焰光度計法高。脂蛋白可以結 合親脂成分,降低與抗體的結合,從而干擾免疫檢測結果。4
(二)溶血 溶血的標本可以給測定值帶來很大的影響,標本溶血后血細胞內含量高的物 質進入到血清可造成結果假性升高,同時溶血可干擾測定中的反應過程及比色,常會導致許多被測指標的濃度假性升高。
(三)黃疸 由于血清總膽紅素含量太高干擾許多指標的測定結果。
(四)某些藥物的影響 某些藥物對測定結果的影響
是不容忽視的。藥物的影響主要有(1)藥物的 代謝產(chǎn)物對某些試驗方法的物理或化學干擾;藥物增加一些蛋白質的結合水平,從而影響這些物質的存在方式;藥物自身與蛋白質結合。總之,正確全面了解藥 物對測定結果的影響對檢驗醫(yī)師和臨床醫(yī)師都是十分必要的,這對正確解釋檢驗 結果有幫助的。
(五)巨酶 免疫球蛋白與酶的復合物被稱之為巨酶,幾存在于所有的診斷酶中,這些結 合可以提高酶的半壽期,從而導致酶的活性升高。最明顯的例子就是 CK1 及 CK2,CK1 是 CK-BB 與免疫球蛋白的復合物,CK2 是線粒體 CK 的多聚物,巨 巨 這兩種類型的巨 CK 均可使 CK-MB 活性上升。另一個例子是巨淀粉酶,它的顯 著特征是使血中淀粉酶活性升高,而尿中淀粉酶則正常。
四、靜脈采集基本要求
(一)患者體位 住院患者臥位。從臥位到直立位:則血漿量減少 12%。大多數(shù)細胞成分及大 分子物質有 5%-15%升高。不應在輸液側采血:如不可避免,必須注明。否則一 切后果采血者負責。試管準備:按檢驗條碼要求準確備齊各種試管而不能混用
(二)血管選擇 應選用較大的血管。血管?。翰裳獣r易發(fā)生塌陷,引起凝血。不能采到足 夠的血量。
(三)注射器 針頭外徑 1mm。5 針頭外徑>1mm 可引起創(chuàng)傷,導致血管碎片入血,促發(fā)凝血。針頭外徑 <0.7mm 血液采集時間延長,針頭內壓力剃度可導致溶血和血小板激活。消毒部位:穿刺處所用消毒液已干
(四)止血帶 壓脈帶控制在 1 min 內。一旦血液入針筒,就應去除。病人握拳:不能一握 一放。抽血過程:應緩慢,不宜過快,將血液沿管壁徐徐注入標本容器,以免產(chǎn)生 大量泡沫或溶血。保證血量:按條碼要求選擇采血容器顏色。避免抽血不當或血量不足。采血容器的顏色、用途和采血量 頭蓋顏色 紫色 藍色 黑色 綠色 紅色 黃色 添加劑 EDTA-K2 枸櫞酸鈉 枸櫞酸鈉 肝素 分離膠促凝 分離膠促凝 用途 采血量(ml)2.0 2.7 1.8 2.0 4.0 4.0 血常規(guī)、HLA-B27、心肌損傷標志物 凝血常規(guī)、等凝血試驗 血沉 血流變學、D-D、FDP 生化檢驗 免疫檢驗
(五)采集多種血液標本的次序: NCCLS 推薦 1.多種血液標本時,采血次序為:血培養(yǎng)管、普通血清管、枸櫞酸鈉管、凝膠分離管/普通血清試管、肝素管/肝素凝膠分離管、EDTA 管、葡萄糖 檢測管。2.同一患者采集多種試管,采血次序:EDTA 管、其他試管、凝血標本。3.試管混勻:抗凝血必須及時、充分、輕輕顛倒混勻血液和抗凝劑,至少 5 次以上。避免采血損傷和用力轉入容器。
(六)抗凝血量
1、血液比例過高——由于抗凝劑相對不足,血漿中出現(xiàn)微血凝塊。
2、血液比例過低——抗凝劑相對過剩,對很多檢驗會造成嚴重影響。
(七)記錄標本信息:標本管上(條碼)注明姓名、科別、床號等相關信息。6
(八)標明采血時間 從采血和離心之間的延誤可導致試驗結果的質量,因此,標明采血時間很重 要。
(九)生物安全 所有采集標本的器皿均應加塞密閉
(十)標本運輸和儲存 采血完成后,時間耽擱越少,檢驗結果的可靠性就越高。1.標本運輸 溫度:在運輸?shù)綑z驗科前,標本必須置于室溫下,標本轉運必須符合儲存 條件。ICSH建議:在室溫(18~25℃)下,4h完成檢測分離血漿和血清:血 細胞與血清或血漿接觸>2h: 血漿或血清將濃縮、分析物被破壞。冷凝集試驗、血氨、凝血項目檢測立即送檢。同一病人同時有數(shù)管血標本送檢,應標明采血先后順序,以便結果不一致 時可進行溯源運輸必須平穩(wěn)。泡沫可使蛋白質變性,血小板激活。試管置于專用試管架和有合適溫度的容器轉運。2.儲存條件: 如不能及時檢查,應放在室溫、-4℃、-20℃、-80℃冰箱中保存。
(十一)避免標本溶血: 是保證標本質量的重要環(huán)節(jié)。應將溶血標本棄置并記錄,重新采血。標本溶血常見原因:采血不熟練、劣質采血器和試管、注射器血急速注入 試管、試管混勻用力過猛、從已有血腫的靜脈采血、采血量不足、穿刺處所用 消毒液未干、注射器和針頭連接不緊采血時空氣進入產(chǎn)生泡。肉眼未見溶血,但乳酸脫氫酶、血紅素、轉氨酶或鉀等值異常增高時,應 警惕是否發(fā)生了非顯性溶血。(十
二)血液濃縮原因: 使用壓脈帶時間過長 進針處按摩、擠壓或摸索尋找 長期靜脈治療 7 硬化或阻塞的靜脈
(十三)拒收標本標準
1、患者信息不全
2、標簽不清,不具備識別系統(tǒng)的唯一性
3、抗凝不當、標本凝固
4、時間延誤
5、溶血標本
6、儲存溫度不當
7、采自輸
液管
8、樣本外漏、容器破損
9、明顯受污染的樣本
10、標本量過少
11、標本項目與申請項目不符
12、醫(yī)囑作廢的標本
13、容器不合格,影響檢驗結果
(十四)接受標本:必須認真核對標本
1、姓名
2、申請項目
3、標本類型
4、試管和抗凝劑合適性
5、標本是否泄漏或容器損壞
6、標本量是否足夠
(十五)治療藥物濃度監(jiān)測采樣時間〕 1 氨基糖苷類抗生素:一般在用藥結束后稍晚一點的時間開始,若滴注為 1h,在滴注結束后 10min 取血樣,若滴注小于 1h,一般在給藥 30 min 取樣。
2、卡馬西平:達穩(wěn)態(tài)血藥濃度時,給下一劑量前立即采樣(谷值)。
3、苯巴比妥:由于半衰期長,采樣時間不重要,可加固定在同一時間采樣,以便比較。
4、丙戊酮:給下一劑量前立即采樣(谷值)8
5、地高辛:給藥后 8—24 小時。(不管是靜脈給藥還是口服給藥,完成藥物 的分布過程需要 8~12h.。
6、茶堿:口吸服后 2~4h。
7、奎尼?。喝裘?6h 服藥一次,則給藥后 6h 左右取血;若每 8h 服藥一次,則給藥后 5~6h 左右取血??傊?,應于下次給藥前采血測谷濃度。
8、環(huán)孢霉素:服藥后 12h。
9、必要時遵照醫(yī)囑?!参⑸飿吮镜牟杉骋?血液及骨髓(一)采集時間
1、一般原則(1)、病人發(fā)熱初期或發(fā)熱高峰.(2)、使用抗菌素前(3)、已經(jīng)用藥者,應在下次用藥前 2.、布魯桿菌感染(1)、最佳時間:發(fā)熱期(2)、還可多次采血,24 小時抽 3~4 次 3.、沙門菌感染(1)、可在不同時間采集標本(2、)腸熱癥患者在病程 1~3 周內采集標本 4.、亞急性心內膜炎:除發(fā)熱期外,應多次采集
5、急性心內膜炎:治療前 1~2 小時內分別在 3 個不同部位抽血樣培養(yǎng)。
6、急性敗血癥:腦膜炎、骨髓炎、關節(jié)炎、急性未處理的細菌性肺炎和腎 盂腎炎除在發(fā)熱期采血外,應在治療前短時間內在身體不同部位采血,分別作需 氧、厭氧培養(yǎng)。
7、不明原因發(fā)熱(1)、發(fā)熱期內多次采血(2)、如果 24 小時培養(yǎng)為陰性結果,應繼續(xù)采集 2~3 份或更多次血樣進行 培養(yǎng)。9
8、肺炎鏈球菌感染:最佳時期為高熱、寒戰(zhàn)或休克時。
9、分枝桿菌感染:感染初期采血
(二)采集部位及頻率
1、急性敗血癥:24 小時內抽血 3 次或更多,在不同部位如左、右手臂或頸 部采集。
2、急性心內膜炎:治療前 1~2 小時內,在三個不同部位采集血標本
3、亞急性心內膜炎:第一天在身體不同部位取三次標本。如果 24 小時培養(yǎng) 為陰性結果,應繼續(xù)采集 2~3 份或更多次多部位采集血樣進行培養(yǎng)。
4、無名熱 :不定期多次、多部位。24 小時內不超過 3 次,如果培養(yǎng)為陰 性結果,應繼續(xù)采集送檢。
(三)標本采集量 成人:10 毫升血液 兒童:3~5 毫升 嬰幼兒:1~2 毫升
(四)標本采集注意事項
1、用 75%酒精消毒瓶蓋,不用碘酒消毒
2、嚴格作好抽血部位的無菌操作
3、同時做需氧和厭氧培養(yǎng)時,先將標本注如厭氧瓶中,然后再注如需氧瓶 里。
4、注如標本的培養(yǎng)瓶立即送檢,如不能立即送檢時,放室溫保存,切勿放 冰箱內
5、化驗單上注明采血時間
二、尿液標本
(一)采集時間:抗菌素應用之前,晨起第一次尿液
(二)采集方法
1、段尿采集方法:清洗尿道口,排尿棄去前段尿,留取中段尿 10 毫升于無 菌容器中立即送檢。
2、集尿法:結核分枝桿菌集菌檢查。將 24 小時尿留在一清潔容器中,取沉 渣 10 毫升送檢 10
3、尿法:通過導尿管留尿 10 毫升于無菌容器中立即送檢
(三)注意事項
1、尿嚴格進行無菌操作
2、集后立即送檢
3、用藥之前進行培養(yǎng)
4、液中不得加防腐劑 三.、糞便標本
(一)采集時間
1、瀉病人在急性期用藥前采集
2、沙門菌感染
(二)集方法
1、自然排便法:自然排便后,挑取有膿血,黏液部位的糞便于無菌容器內 送檢。
2、直腸拭子法:不易獲得糞便可采用直腸拭子法采集。
(二)注意事項
1、標本新鮮
2、用藥前采集
3、腹瀉病人在急性期采集
四、痰及上呼吸道標本
(一)標本采集時間
1、用藥前清晨痰
2、鼻咽拭子
(二)采集方法
1、自然咳痰法:清晨起床后,清水反復漱口后用力除第一口痰于無菌容器 中立即送檢。
2、上呼吸道標本:采用無菌棉拭子
(三)注意事項 標本采集后立即送檢,如不能立即送檢,放冰箱保存
五、化膿和創(chuàng)傷標本 用藥前,無嚴格時間要求 腸熱癥在 2 周以后;胃腸炎病人在急性期采集新鮮糞便 11
(一)標本采集
1、開放性感染:標本采集前清創(chuàng)創(chuàng)口,然后用無菌拭子采取膿汁及病灶深 部分泌物于無菌管中立即送檢。
2、閉鎖性膿
腫:無菌操作,穿刺抽取標本于無菌管中立即送檢。
(二)注意事項
1、藥前采集標本
2、能立即送檢標本,放 4℃保存,但培養(yǎng)淋病奈瑟菌和腦膜炎奈瑟菌標本除 外。
六、穿刺液
(一)腦脊液
1、集時間 懷疑為腦膜炎的病人,在用藥前應立即采集腦脊液進行培養(yǎng)
2、集方法 用腰穿方法采集腦脊液 3~5 毫升于無菌管中立即送檢
(二)注意事項
1、于細菌檢測:收集腦脊液后 15 分鐘內送檢,腦脊液不可放冰箱保存。
2、于病毒檢測:腦脊液標本應放置冰塊,在 4℃15 分鐘內送檢。
3、行腰穿過程中,嚴格無菌操作
(三)膽汁及穿刺液
1、檢測時間:懷疑感染存在,應盡早在用藥之前或停止用藥后 1~2 天采集 標本
2、采集方法:無菌穿刺抽取標本于無菌管中立即送檢,量不少于 1 毫升
七、燒傷標本
(一)、采集時間 早期、深 П 度燒傷溶痂和Ⅲ度焦痂分離期、后期每天采 集燒傷標本于無菌管中立即送檢
(二)、采集方法
(三)、注意事項
1、嚴格無菌操作
2、床前采集標本進行厭氧培養(yǎng)
3、燒傷 12 小時以后進行采集創(chuàng)面標本,可獲得陽性結果
八、生殖道標本 用無菌拭子,直接從燒傷創(chuàng)面的膿汁多部位采集 12
(一)標本采集 尿道分泌物、陰道分泌物、宮頸分泌物、宮嗆內容物、前列腺按摩液、精液 等嚴格無菌操作留取于無菌管中立即送檢。
(二)注意事項
1、嚴格無菌操作
2、采取宮頸標本避免觸及陰道壁
3、床前采集標本進行厭氧培養(yǎng) 九.組織標本
(一)采集時間
1、淺表皮膚黏膜
2、深部組織
3、尸檢標本
(二)采集方法
(三)注意事項
1、嚴格無菌操作
2、各種活檢組織標本,常溫下最長保存 24 小時
3、甲醛固定的組織塊標本不用于病原微生物分離 附:樣本拒收標準
1、樣本上無患者條碼或條碼不符和要求
2、樣本外漏、容器破損及明顯受污染的樣本
3、樣本的檢驗項目申請不適合進行
4、當日重復送樣本(血培養(yǎng)除外)使用抗生素之前采用 手術或內窺鏡檢查是采集 死后迅速采集 無菌操作留取標本于無菌管中立即送檢 〔骨髓形態(tài)標本的采集〕
一、髓標本的采集是由臨床醫(yī)生采集,應適量不得超過 0.2ml,取材應避免混血。
二、腦脊液標本的采集是由臨床醫(yī)生采集,采集后應立即送檢,接到標本后應及 時制作標本。
三、血液涂片的采集(包括血細胞形態(tài)檢查和瘧原蟲檢查)方法兩種: 由臨床護士用 BD 管采血,采血后標本應盡快送檢,應在 2 小時內制成血涂 片,標本不可放置過久。13 在未制作血涂片前,標本嚴禁放入冰箱內保存,分院送檢的標本應制成血涂 片送檢。冬季室外送檢的標本應保溫,避免標本受凍溶血,如果標本放置時間超過 24 小時(夏季溫度高)可拒收標本?!布毎z傳(染色體)標本的采集〕
一、預約時要求患者采血化驗前半個月內盡量避免應用各種藥物。
二、到本室采血時要求患者精神盡量放松,因為患者過度緊張時機體釋放的血管 緊張素會影響染色體的生長?!裁撀浼毎麡吮镜牟杉?/p>
一、痰標本: 留取痰標本的方法有自然咯痰、氣管穿刺吸取、經(jīng)支氣管鏡抽取等,以自然咯痰為主,本應新鮮。應囑患者用力咳出氣管深處真正的呼吸道分泌 物,于干凈痰盒內,密封送到細胞室,而勿混入唾液及鼻咽部分泌物。
二、液體標本(胸、腹水、心包液、尿液、腦脊液等)要求新鮮,送實驗室應立 即制片,否則細胞自溶退化而破壞,影響診斷。如不能立即制片,可在標本 中加入 40%甲醛溶液以防止細胞自溶。液體標本要求標本量 50-100ml(腦 脊液除外)。
三、乳腺溢液:詢問病史,讓病人自行或制片人員沿乳腺導管輕輕擠壓,將第一 滴溢液去掉,再擠出制片,如有血選擇血性乳液,粘片制成薄厚均勻的涂片,馬上固定。
四、氣管鏡刷片、婦科刮片由臨床醫(yī)生涂制。但標本需馬上固定。若做液基細胞 按液體標本方法制片。
五、穿刺細胞學:到時本室取標本?!惭蚨ㄎ粯吮镜牟杉?/p>
一、患者清晨 3 點排尿一次,這次尿不要,然后留取 3 點 6 點全程尿一次。全部 收集在干燥、清潔、無污染的容器內來檢驗時帶來。
二、早 8 點到檢驗科由血尿定位定提供清潔尿杯分三杯留取新鮮尿液。
三、本室可保存尿液中存在的有形成分形態(tài)冰箱溫度為 2℃~8℃?!布S便標本的采集〕 14 糞便標本的采集方法直接影響檢驗結果的準確性,通常采取自然排出的糞 便:
1、留取新鮮指頭大?。? 克)的大便,放入干燥、清潔、無吸水性的容器 內送檢。不要混入其它雜物,容器上應貼好標簽、條碼或注明患者姓名、科別、床號、收集時間及
檢測項目。
2、本應選擇具有病理意義的便(如濃血、血粘液、水樣等選?。诎胄?時內送檢,2 小時內檢測完畢,否則應 PH 變化及消化酶的影響可使便的細胞成 分破壞分解。最多不應超過 4 小時。
3、無法排便而又必須檢查時,可經(jīng)肛門用肛試子采便。
4、試驗應囑咐患者在收集標本前三天禁食動物性食物,并禁服鐵劑和維生 素 C.且連續(xù)檢查三天,收集后須迅速送檢。
5、寒冷時應保持溫度,避免凍溶防止有形成分破壞?!材驑吮镜牟杉?/p>
一、根據(jù)不同檢驗目的。留取晨尿和餐后 2h 尿、12h 尿、24h 尿及隨機尿。.尿常規(guī)檢驗通常為:
(一)、新鮮晨尿(這時的尿標本較濃縮和酸化,不受運動及進餐等影響。適用于尿蛋白、尿沉渣、尿亞硝酸鹽檢驗及細菌培養(yǎng))和隨機尿(尿液可 能被稀釋或受進餐、藥物以及新陳代謝等影響,尿中成分檢出情況不盡相同。餐后尿檢測易出現(xiàn)糖尿)。
(二)、尿膽原檢測以 14:00~16:00 時間段內留取的尿液為好。
(三)、尿液定量檢查需要留取 12h 或 24h 的混合尿液,留取時應按規(guī)定時 間內排出之尿液裝入含有合適防腐劑的潔凈容器內,混勻后記錄總量,取 10ml 送檢。1、12h 尿:適用于 Addis 計數(shù)。試驗當日清晨起,除正常飲食外,不得 再飲水,以利尿液濃縮。于晚上留尿開始時,囑患者排尿并棄去,收集此后 12h 內的全部尿液。2、24h 尿:適用于代謝產(chǎn)物 24h 定量測定或 24h 尿沉渣抗酸桿菌檢查。留取要求同 12h 尿。15
二、尿液標本采集應清潔、干燥的一次性容器,應用時貼上條碼。避免經(jīng)血、白帶、精液、糞便混入。標本留取后及時送檢,以免因光線、細菌滋生造成 化學物質和有形成分的改變和破壞。作細菌檢驗的標本,在微生物標本采集 注意事項介紹。
三、尿標本的防腐與保存: 冷藏法:4℃冰箱,不得超過 6 小時。但應注意,有些成分如尿酸鹽在低 溫時會沉淀析出,影響其化學成分的測定;同時,堿性尿液中的 紅細胞以及細胞管型即使在冰箱中也會破壞。因此,要根據(jù)檢測 項目的需要,選擇不同的防腐及保存方法。甲苯法:100ML 尿加 0.5ML 甲苯,適用于 24 小時尿液化學檢查?!睬傲邢贅吮玖羧∽⒁馐马棥?由臨床醫(yī)師進行,標本少時 1 滴,多時可達 1ml 左右。置潔凈載物玻片上,立即送檢。以防干涸。〔精液標本的采集〕
一、囑患者禁止合房七天,留取精液。
二、直接用干燥、防漏、潔凈的容器留取。容器不易過大,以免沾留太多。要求 在半小時內保溫送檢驗科。冬天最好放在內衣口袋里。
三、標本采集次數(shù):精子生成的日間變化較大,因此,對于少精癥患者不能僅憑 1 次檢查結果診斷。一般間隔 1~2 周再檢查 1 次,連續(xù)檢查 2~3 次后再作 判斷。
四、避免用避孕套工具留取。影響活動力。
五、必要時在醫(yī)生指導下留取?!矟{膜腔穿刺液的采集〕由臨床醫(yī)師進行;穿刺必須注意無菌操作,勿使細菌污染穿刺部位及標本。采取量由檢驗目的按條碼要求而定。為防止細胞變性、凝塊發(fā)生或細菌溶解,應 及時送檢及檢驗。如不能送檢,可加適量的枸櫞酸鈉抗凝劑(藍色真空管)內,混均后立即送檢。如要觀察標本有無凝固現(xiàn)象,則不能加抗凝劑。[胃液標本采集] 16 先將晨間空腹殘余胃液抽空棄去。然后在 1h 內連續(xù)抽出胃液放入同一瓶內。〔腦脊液標本的采集〕
一、本由醫(yī)通過腰椎穿刺采集。穿刺應順利,避免將因液混入標本。
二、標本一般收集 3 管,每管 2ml。第 1 管做細菌培養(yǎng);第 2 管做化學或免疫檢 查;第 3 管做常規(guī)及細胞計數(shù)。
三、標本就及時送檢、及時檢驗。久置可致細胞破壞、變性、自容,糖分解及病 原菌破壞或溶解等影響檢驗結果。17 患者
1、狀態(tài)
2、時間 避免劇烈活動、禁食 12h 后作為采血標準。一般生理成分在晨起時都處于較低水平,隨著起床和活動增加而逐步 上升,下午較高,入夜休息和睡眠后漸低,晨起前最低。個體日變動差(最高與最低)項目 鈉(mmol/L)鉀(mmol/L)氯(mmol/L)磷(mmol/L)總蛋白(mmol/L)白蛋白/球蛋白(mmol/L)尿素氮(mmol/L)尿酸(mmol/L)
3、生活環(huán)境
4、藥物
5、吸煙
6、性別 停服能干擾檢查項目的藥物,特別是進行臟器功能試驗時更為重要 吸煙對檢查的影響與吸煙量成正比.對許多檢查項目有影響,女性受性期周期影響較大,男女發(fā)育階段也 日變動差 4.8 0.4 3 0.22 0.6 0.3 1.2 0.49 項目 膽固醇(mmol/L)甘油三酯(mmol/L)堿性磷酸酶(King U)丙氨酸氨基轉移酶(U/L)3.6 日變動差 0.52 0.33 門冬氨酸
氨基轉移酶(U/L)3.9 乳酸脫氫酶(U/L)膽堿酯酶(⊿ph)淀粉酶(somogy U/L)2.7 0.1 17 有一定的差別。
7、年齡 一般是從嬰乳兒、兒童、青少年、青壯年、更年期和老年,從生長發(fā) 育代謝旺盛至代謝減慢、衰老,各種生物活性物質從活躍到降低,免疫功能 從發(fā)育不全到發(fā)育完善直致衰老、萎縮,其相關的檢查也有相應的變化。18
第三篇:檢驗科檢驗標本采集簡述
?檢驗科檢驗標本采集簡述
一、概述
? 實踐證明,為保證臨床檢驗質量,必須做到全過程質量控制,即對實驗室檢查的全過程進行全面的質量控制和質量管理。這里包括:實驗前(分析前)、實驗中(分析中)和實驗后(分析后)三個階段的質量控制,其中實驗前質量控制是全面質量控制的前提。國內外均有報道,檢驗結果誤差中70%左右來自實驗前(分析前),而且實驗前(分析前)誤差是儀器、試劑、質控品和標準品等再好也無法解決的。因此,必須注意做好實驗前質量管理。
二、實驗前質量控制主要包括:
(一)患者的準備;
?許多檢測對飲食、飲水和藥物有特殊要求,如:空腹標本是指空腹8h后采集的標本,血脂測定須禁食12-14h,情緒緊張會使血糖升高,醛固酮檢測要在起床活動前取臥位血,起床后活動2h取立位血,嗎啡、可卡因可使淀粉酶(AMY)升高; ?
(二)標本的采集;
1、止血帶壓迫時間不宜超過40秒,否則會導致乳酸升高、pH值降低、K、Ca升高、淤血、靜脈擴張等;
2、采血后應立即上下顛倒混勻5-10次采血管,不可用力震蕩,搖晃; ?
3、靜脈血避免在輸液同時取血,輸液不僅使血液稀釋,而且會對血糖和電解質等檢驗結果發(fā)生嚴重干擾;
4、多個組合檢測項目同時采血應按下列順序:血培養(yǎng)-無添加劑管(紅帽)-凝血管(黃帽)-枸櫞酸鹽管(黑/藍帽)-肝素管(綠帽)-EDTA管(紫帽)-草酸鹽/氟化鈉管(灰帽);
(三)標本的儲存;
(四)標本的運送;
(五)標本送出及簽收;
(六)標本的處理;不論是抗凝血還是非抗凝血,為了縮短血清或血漿與血細胞的接觸時間,從標本采集開始,必須在2h內將全血處理為血清或血漿。
(七)已知的和需考慮的生物因素和干擾因素等。
第四篇:臨床檢驗標本采集規(guī)范
臨床檢驗標本采集規(guī)范
一
血常規(guī)檢驗標本 用EDTA-2K(EDTA-K22H2O)1.5~2.2mg/ml抗凝(EDTA抗凝管、紫色帽)采血。
.2 注意事項:
A 按抗凝管刻度準確采血至2ml。
B 采血后立即上下顛倒混勻5~10次,不可用強力震蕩,以免造成溶血。C 采血后盡快送檢(為保證結果準確,必須在2h內完成檢測)。
二
紅細胞沉降率(血沉、ESR)檢驗標本 靜脈采集枸櫞酸鈉(109mmol/L,即32.06g/L)抗凝血(枸櫞酸鈉抗凝管、黑色帽)。2 注意事項:
A 單獨采1管血,按抗凝管刻度準確采血至2ml(抗凝劑:全血=0.4:1.6)。B 采血后立即上下顛倒混勻5~10次,不可用強力震蕩。C 采血后盡快送檢(為保證結果準確,必須在2h內完成檢測)。
三
凝血檢測(PT、APTT、Fbg、TT、D2-聚體)標本 靜脈采集枸櫞酸鈉(109mmol/L,即32.06g/L;抗凝劑:全血=0.2:1.8)抗凝血(枸櫞酸鈉抗凝管、藍色帽)。注意事項:
A 單獨采1管血,按抗凝管刻度準確采血至2ml。B 采血后立即上下顛倒混勻5~10次,不可有凝塊。
C 采血后盡快送檢(為保證結果準確,必須在2h內完成檢測)。D 空腹采血(餐后脂血會影響檢驗結果)。
四
血型與交叉配合標本 用EDTA-2K(EDTA-K22H2O)1.5~2.2mg/ml抗凝(EDTA抗凝管、藍色帽)采血。
.2 注意事項:
A 按抗凝管刻度采血至2~3ml。最好單獨采血,便于標本保存。B 采血后立即上下顛倒混勻5~10次,不可用強力震蕩,以免造成溶血。
五 血流變檢查標本 用肝素鈉抗凝管(肝素鈉、綠色帽)2 注意事項:
A 按抗凝管刻度采血至4~5ml。
B 采血后立即上下顛倒混勻5~10次,不可用強力震蕩,以免造成溶血。
六
尿液常規(guī)檢查標本 住院病人盡量留取晨尿(安靜狀態(tài)下留取清晨第一次尿)。2 門急診病人可留取隨機尿,但結果受多種因素影響。尿液采集于潔凈尿杯中,不可使用其它未經(jīng)洗滌的器皿如藥瓶、試劑瓶等。標本留取后盡快送檢(為保證結果準確,必須在2h內完成檢測)。
七
尿液特殊檢查標本 尿液成分定量檢查應根據(jù)檢查目的選擇并在檢驗科領取防腐劑。
A 尿愛迪氏計數(shù)或3h計數(shù):甲醛(40%),5ml/L尿液;3h和12h尿沉渣計數(shù)的留尿時間分別為(5:30-8:30)和(20:00-次日8:00)。B 尿蛋白或尿糖定量:甲苯,5~20ml/L尿液。
C 尿17-羥、17-酮、腎上腺素、兒茶酚胺和尿鈣等:濃鹽酸,10ml/L尿液。2 尿稀釋濃縮試驗:試驗日正常進餐,上午8點排尿棄去,沒隔2h留尿一次,至晚上8點共六次標本;晚8點至次晨8點為夜尿,收集于一個容器中,分別標記時間后送檢。
八
糞便常規(guī)檢查標本 一般應為新鮮的自然排出的糞便3~5g,必要時可肛試子取出,但需注明。2 樣品置于潔凈容器中,最好用帶蓋塑料盒。
3糞便應選取含膿、血、粘液等異常成分進行檢查。做隱血試驗時,應囑病人檢查前3天禁食肉類、含動物血的食物。
九
漿膜腔積液檢查標本 標本一般由臨床醫(yī)師無菌穿刺采取。送檢標本量:常規(guī)檢查、生化檢查、細胞學檢查各留取2ml;細菌學檢查用無菌管采集標本,結核菌檢查留取10ml。標本采集后必須立即送檢,否則可因標本凝固、細胞變性等導致標本無法檢測或結果不準確。用于細胞學檢查時,可在標本中加適量EDTA抗凝,但還需留1管不加抗凝劑的標本用于觀察積液的凝固性。
十臨床化學檢驗標本 一般生化檢查(肝功、腎功、血脂、血糖、免疫、電解質、心肌酶等)留取不抗凝血(紅色帽、真空負壓管),采血量視檢查項目多少而定,一般為4~5ml。2 糖化血紅蛋白需用EDTA抗凝管,操作規(guī)程同血常規(guī)標本。3 血鉀檢測標本須立即送檢,2h內完成檢測。4 空腹采血。如為餐后標本,應在申請單上注明。
十一
臨床免疫檢驗及化學發(fā)光檢驗標本 一般免疫學檢驗(乙肝病毒、丙肝病毒、HIV、梅毒螺旋體、結核、自身免疫病等)和化學發(fā)光檢驗(各種激素、腫瘤標志物等)留取不抗凝血(紅色帽、真空負壓管),采血量視檢查項目多少而定,一般為4~5ml。2 嚴格按生物安全有關規(guī)定采血??崭共裳H鐬椴秃髽吮?,應在申請單上注明。
十二
微生物學檢驗標本 標本采集、運送、驗收和處理注意事項 ① 標本采集
A 申請單標記必須清楚(姓名、性別、年齡、臨床診斷、標本來源、采集時間、檢查項目、抗生素應用情況等),以便實驗室合理選用培養(yǎng)基。B 盡量在抗生素應用前采集標本。C 標本采集應嚴格執(zhí)行無菌操作。
D 采集標本的容器必須經(jīng)滅菌處理或使用一次性無菌專用容器。
② 標本運送
A 標本采集后盡快送微生物室。
B 標本采集后在室溫下超過2h未送達實驗室,視為不合格標本。③ 標本驗收
A 實驗室只能接受和處理合格標本。
B 實驗室對不合格標本退回時,須注明原因,并及時與臨床聯(lián)系。2 微生物檢驗標本采集和處理
① 尿液標本采集和處理:通常留取晨起第一次尿液,及時送檢,并保證2h內接種;不能及時送檢時,標本應置冰箱保存,并于8h內送檢。懷疑沙門氏菌感染時,應于發(fā)病2周左右采集標本;懷疑鉤端螺旋體感染時,應于發(fā)病后2周左右采集標本。常用的標本采集方法如下:
A 中段尿采集法:成年男性和女性分別用肥皂水清洗尿道口和外陰部,再用滅菌水
沖洗尿道口,然后排尿棄去前段尿液,于帶蓋的無菌試管中留取中段尿液5~10ml。B 導尿法:用導尿管導取5~10ml尿液于無菌試管中;長期留置導尿管者應更換導尿 管留尿;留置導尿時,用無菌消毒法消毒導尿管外部及導尿管口,用無菌注射器通過導尿管抽取尿液送檢,不可采集尿液收集袋中的尿液送檢。
C 其它方法:膀胱穿刺或腎盂尿采集法須由臨床醫(yī)師采集。
② 糞便標本采集和處理
A 采集時間:腹瀉患者處于急性期,盡量在用藥前采集糞便;懷疑傷寒患者在發(fā)病兩周以后采集糞便;懷疑霍亂時應立即采集糞便送檢。
B 采集方法:一般患者,取新鮮糞便的黏液、膿血或絮狀物等有意義成分2~3g或1~3ml,盛無菌容器內送檢;難以獲得糞便或排便困難的患者和嬰幼兒,可用直腸試子采集標本,再插入滅菌試管中送檢。③ 痰及下呼吸道標本采集和處理
A 自然咳痰法:晨痰為佳;先嗽口,清潔牙齒和口腔;再用力咳出呼吸道深部的痰;痰量不得少于1ml;咳痰困難者可先做霧化處理。
B 小兒取痰法:用彎壓舌板向后壓舌,將試子深入咽部,小兒因壓舌板刺激引起咳嗽,噴出的肺或氣管分泌物粘在試子上送檢。
C 支氣管鏡、支氣管穿刺、支氣管肺泡灌洗等采集法:由臨床醫(yī)師實施。④ 血液及骨髓培養(yǎng)標本
A 抗生素治療前,嚴格無菌靜脈采血8~10ml(兒童1~4ml);骨髓1~2ml。B 無菌注入專用培養(yǎng)瓶中送檢。
C 如已用抗生素不能停用時,可在48h內分別于下次抗生素使用前,多次采集血液標本送檢。
D 疑為心內膜炎時,為提高陽性檢出率,可酌情不同部位、不同時間多次采血送檢。⑤ 腦脊液培養(yǎng)標本
A 懷疑腦膜炎時應立即采集腦脊液,最好在抗生素使用前采集。B 無菌腰穿采集腦脊液1~2ml,立即送檢。⑥ 穿刺液培養(yǎng)標本
A 包括胸水、腹水、心包液、關節(jié)液、鞘膜液等。B 在抗生素使用前采集或在停用抗生素2~3天后采集。C 無菌穿刺采集,標本量不少于1ml。
D 為防標本凝固,可在無菌盛器中加入適量滅菌肝素。⑦ 胃液及膽汁培養(yǎng)
A 采集方法:抽取空腹胃液5ml,置無菌管內送檢;膽汁培養(yǎng)標本由十二指腸引流法或膽囊穿刺法或手術中留取膽汁5ml,置無菌管內送檢。B 標本采集后必須立即送檢。⑧ 膿汁和病灶分泌物培養(yǎng)
A 標本采集前,先對病灶周圍消毒,然后用無菌方法采取膿汁或病灶分泌物或組織。B 標本采集后立即置無菌管內送檢。⑨ 眼、耳、鼻、咽試子分泌物培養(yǎng)標本 A 用無菌試子常規(guī)采集標本。
B 標本采集過程中應注意避免被粘膜上的正常菌群污染。C 標本采集后連同試子一起置無菌管內送檢。⑩ 泌尿生殖道培養(yǎng)標本
A 尿道分泌物:清洗尿道后采取尿道溢出的膿性分泌物,或用無菌試子插入尿道2~4cm處輕輕轉動后取出,置無菌試管中立即送檢。
B 陰道、宮頸分泌物:通過陰道擴張器,用滅菌試子采取陰道口或宮頸管1~2cm處分泌物,置無菌試管中送檢。
C 前列腺液:清洗尿道、沖洗膀胱后用前列腺按摩法采集前列腺液于無菌試管中,立即送檢。
D 精液:受檢者應5天以上未派精,清洗尿道后用手淫或體外排精法,射精于無菌試管中立即送檢。
E 潰瘍分泌物:滅菌生理鹽水清洗患處,用無菌試子取其邊緣或基底部的分泌物,置無菌試管中立即送檢。⑾
燒傷感染培養(yǎng)標本
燒傷12h后用無菌棉試子采集標本;要注意從多個創(chuàng)面取樣;燒傷嚴重感染時易發(fā)生敗血癥,創(chuàng)面取樣的同時應采集血樣送做血培養(yǎng)。
⑿
真菌感染培養(yǎng)標本
A 淺部真菌感染標本采集:皮癬者常規(guī)消毒皮膚,從皮損邊緣刮取鱗屑,置無菌平皿中送檢;皮膚潰瘍則采集皮損周圍膿汁或組織;毛發(fā)則采集其根部折斷處,至少5~6根送檢;指(趾)甲:消毒指(趾)甲并去掉其表面部分,取可疑病變部分,用刀片修成小薄片5~6片,置無菌容器中送檢。B 深部真菌感染標本采集:
血液:無菌采血8~10ml,注入血培養(yǎng)瓶中,立即送檢;如不能立刻送檢時血培養(yǎng)瓶應放室溫,但不可超過8h。
腦脊液:采樣量不少于3ml,分別注入兩支無菌試管中送檢(一支做真菌培養(yǎng)和墨汁染色,一支做普通培養(yǎng))。
呼吸道及泌尿生殖道標本:采集方法同普通培養(yǎng)。⒀
厭氧菌感染培養(yǎng)標本
A 標本采集:嚴格執(zhí)行無菌操作,避免標本污染和與空氣接觸;用注射器抽取胸水、腹水、心包液、關節(jié)液、膽汁、腦脊液或無菌手術抽取膿液;抽出液體標本后,要盡快排除注射器內的空氣。
B 標本運送:標本采集后不得冰箱儲存,必須盡快(半小時內)送檢;標本運送可采用注射器(已驅氧)或含運送培養(yǎng)基的無氧小瓶或厭氧罐。
第五篇:血液標本采集與處理
血液標本采集與處理
一:靜脈采血法
(一)普通采血法 試劑與器材 1.30g/L碘酊。2.75%乙醇。
3.其他 一次性注射器,壓脈帶,墊枕,試管,消消毒棉簽。操作
1.取試管一支(需抗凝者應加相應抗凝劑)。
2.打開一次性注射器包裝,取下針頭無菌帽,將針頭與針筒鏈接,針頭斜面對準針筒刻度,抽拉針栓檢查有無阻塞和漏氣,排盡注射器內的空氣,套上針頭無菌帽,備用。3.受檢者取坐位,前臂水平伸直置于桌面枕墊上,選擇容易固定、明顯可見的肘前靜脈或手背靜脈,幼兒可用頸外靜脈采血。
4.用30g/L碘酊自所選靜脈穿刺處從內向外、順時針方向消毒皮膚,待碘酊揮發(fā)后,再用75%乙醇以同樣方式脫碘,待干。
5.在穿刺點上方約6CM處系緊壓脈帶,矚受檢者緊握拳頭,使靜脈充盈顯露。
6.取下針頭無菌帽,以左手拇指固定靜脈穿刺部位下端,右手拇指和中指持注射器針筒,市指固定針頭下座,針頭斜面和針筒刻度向上,沿靜脈走向使針頭與皮膚呈30度角,快速刺入皮膚,然后成5度角向前刺破靜脈壁進入靜脈腔。見回血后,將針頭順勢深入少許。穿刺成功后右手固定注射器,左手松壓脈帶后,再緩緩抽動注射器針栓至所需血量。受檢者松拳,消毒干棉球壓住穿刺孔,拔出針頭。矚受檢者繼續(xù)壓按針孔數(shù)分鐘。
7.取下注射器針頭,將血液沿試管壁緩緩注入試管中??鼓枇⒓摧p輕搖勻,蓋緊試管塞,及時送檢。《附注》
1:采血部位通常選擇肘前靜脈,如此處靜脈不明顯,可采用手背,手腕,腘窩和外踝部靜脈。幼兒可采用頸外靜脈。2:采血一般取坐位或臥位。體位影響水分在血管內外的分布,從而影響被測血液成分濃度。
3:壓脈帶捆扎時間不應超過1分,否則會使血液成分濃度發(fā)生改變。
4:血液注入試管前應先取下注射器針頭,然后將血液沿試管壁緩緩注入試管中,防止溶血和泡沫產(chǎn)生。需要抗凝時應與抗凝劑混勻,切勿用力震蕩試管。
5:如遇受檢者發(fā)生暈針,應立即拔出針頭,讓其平臥。必要時可用拇指壓掐或針刺人中,合谷等穴位,或嗅吸芳香酊等藥物。
二,真空采血管采血法 原理
將有頭蓋膠塞的采血試管預先抽成不同的真空度,利用其負壓自動定量采集靜脈血樣。試劑與器材
目前真空采血器有軟接式雙向采血針系統(tǒng)(頭皮靜脈雙向采血式)和硬接式雙向采血針系統(tǒng)(套筒雙向采血式)兩種,都是一端為穿刺針,另一端為刺塞針。另附不同用處的一次性真空采血管,有的加有不同抗凝劑,或其他添加劑,均均用不同顏色頭蓋標記便于識別。真空采血法復合生物安全措施。操作
一:消毒:為受檢者選靜脈與消毒
二:采血
1:軟接式雙向采血針系統(tǒng)采血,拔除采血穿刺針的護套,以左手固定受檢者的前臂,右手拇指和示指持穿刺針,沿靜脈走向使針頭與皮膚呈30度,快速刺入皮膚,然后成5度角向前刺破靜脈壁進入靜脈腔,見回血后將刺塞針端直接刺穿真空采血管蓋中央的膠塞中,血液自動流入試管內,如需多管血樣,將刺塞端拔出,刺入另一真空采血管即可。達到采血量后,松壓脈帶,矚受檢者松拳,拔下刺塞端的采血試管。將消毒干棉球壓住穿刺孔,立即拔出穿刺針,矚受檢者繼續(xù)按壓針孔數(shù)分鐘。2:硬連接式雙向采血針系統(tǒng)采血:靜脈穿刺如上:采血時將真空采血試管擰入硬連接式雙向采血針的刺塞針端中,靜脈血就會自動流入采血試管中,拔下采血試管后,再拔出穿刺針頭。3:抗凝血
須立即混勻。附注
1.使用真空采血器前應仔細閱讀廠家說明書,嚴格按說明書要求操作。
2.盡量選粗大的靜脈進行穿刺。
3.刺塞針端的乳膠套能防止拔出采血試管后繼續(xù)流血污染周圍,達到封閉采血防止污染環(huán)境的作用,因此不可取下乳膠套。
4.帶乳膠套的刺塞端須從真空采血試管的膠塞中心垂直穿刺。
5.采血完畢后,先拔下刺塞端的采血試管,后拔穿刺針端。6.使用前勿松動一次性真空采血管蓋塞,以防采血量不準。
7.如果一次采血要求采取幾個標準時,應按以下順序采血:血培養(yǎng)管,無抗凝劑及添加劑管,凝血象管,有抗凝劑管。