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      微生物學(xué)實(shí)驗(yàn)技術(shù)考試要求

      時(shí)間:2019-05-12 19:47:05下載本文作者:會(huì)員上傳
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      第一篇:微生物學(xué)實(shí)驗(yàn)技術(shù)考試要求

      課程名稱:微生物學(xué)實(shí)驗(yàn)技術(shù)(微生物專業(yè))

      一、考試的總體要求

      微生物學(xué)實(shí)驗(yàn)技術(shù)是微生物學(xué)和工業(yè)生物技術(shù)等專業(yè)技術(shù)人才最重要的專業(yè)基礎(chǔ)技能。通過(guò)本課程的考核,重點(diǎn)檢查考生對(duì)微生物學(xué)基本實(shí)驗(yàn)技能及其原理和應(yīng)用等掌握情況,主要包括微生物的染色與顯微觀察技術(shù);微生物的分離純化與培養(yǎng)技術(shù);微生物生長(zhǎng)測(cè)定與生理生化技術(shù)、微生物遺傳育種技術(shù)以及分子微生物學(xué)實(shí)驗(yàn)技術(shù)等。要求掌握實(shí)驗(yàn)的設(shè)計(jì)原理、主要步驟、注意事項(xiàng)以及該實(shí)驗(yàn)技術(shù)的適用對(duì)象等。

      二、試題類型及比例

      1、簡(jiǎn)答題:約40%

      2、問(wèn)答題:約60%

      三、考試形式及時(shí)間

      考試形式為筆試??荚嚂r(shí)間為3小時(shí)。

      四、考試主要內(nèi)容

      (一)微生物染色與顯微觀察技術(shù)

      1.顯微鏡的使用及維護(hù)

      2.細(xì)菌簡(jiǎn)單染色、革蘭氏染色、芽孢染色與細(xì)菌形態(tài)觀察

      3.酵母菌美蘭染色與酵母細(xì)胞形態(tài)觀察

      4.霉菌的形態(tài)觀察

      (二)微生物的分離純化與純培養(yǎng)技術(shù)

      1.培養(yǎng)基的制備與滅菌(含玻璃器皿的包扎)

      2.無(wú)菌操作技術(shù)

      3.平板劃線、傾注平板與涂布平板分離技術(shù)

      (三)微生物生長(zhǎng)測(cè)定與生理生化技術(shù)

      1.微生物大小與總數(shù)測(cè)定

      2.平板菌落計(jì)數(shù)法及其它生長(zhǎng)測(cè)定技術(shù)

      3.微生物的生理生化試驗(yàn)

      4.水的衛(wèi)生細(xì)菌學(xué)檢驗(yàn)

      (四)微生物遺傳育種及分子微生物學(xué)實(shí)驗(yàn)技術(shù)

      1.從自然界中分離篩選特定類型的微生物

      2.微生物誘變技術(shù)及特定突變型的篩選

      3.微生物原生質(zhì)體制備與融合技術(shù)

      4.細(xì)菌質(zhì)粒DNA的抽提與電泳檢測(cè)

      5.細(xì)菌質(zhì)粒DNA的轉(zhuǎn)化

      6.DNA的PCR擴(kuò)增及其產(chǎn)物純化

      五、主要參考書目

      1.諸葛健,李華鐘主編,微生物學(xué)(第二版,實(shí)驗(yàn)部分),科學(xué)出版社,2009

      2.諸葛健,李華鐘,王正祥主編,微生物遺傳育種學(xué)(實(shí)驗(yàn)部分),化學(xué)工業(yè)出版社,2009

      3.諸葛健主編,工業(yè)微生物實(shí)驗(yàn)與研究技術(shù),科學(xué)出版社,2007

      第二篇:微生物學(xué)實(shí)驗(yàn)安排及要求

      微生物學(xué)實(shí)驗(yàn)安排

      第六周: 1.培養(yǎng)基的制備;2.物品的包埋準(zhǔn)備;3.高壓蒸汽滅菌; 第七、八周:4.樣品中微生物的分離;

      1.抗生素產(chǎn)生菌的分離與抗菌活性檢測(cè)

      2.(土壤中、植物體內(nèi))拮抗植物病原菌的微生物分離及鑒定

      3.高產(chǎn)蛋白酶菌株的分離與酶活性檢測(cè)

      4.高產(chǎn)纖維素酶菌株的分離與酶活性檢測(cè)

      5.高產(chǎn)脂肪酶菌株的分離與酶活性檢測(cè)

      6.高產(chǎn)淀粉酶菌株的分離與酶活性檢測(cè)

      7.噬菌體的分離及效價(jià)測(cè)定

      8.光合細(xì)菌的分離及鑒定

      9.抗藥性菌株的分離及抗藥性測(cè)定(例如如抗青霉素、鏈霉素等常用藥物)

      10.(多環(huán)芳烴類、鄰苯二甲酸酯類有機(jī)污染物、苯酚、尿素)高效降解菌的分離鑒定及降解活性檢測(cè)

      11.學(xué)生根據(jù)興趣自擬題目

      要求:2~3人一組,各組自己查閱相關(guān)資料然后設(shè)計(jì)實(shí)驗(yàn)方案主要包括樣品的采集、所用的培養(yǎng)基配方、分離方法、鑒定的方法、活性測(cè)定的方法等方面;各組長(zhǎng)在3月18日前將實(shí)驗(yàn)方案提交給所有指導(dǎo)教師:;魏靜lalsos@swu.edu.cn;徐耀波 xuyaobo@swu.edu.cn。郵件主題及文件命名:2010級(jí)*班*組+組長(zhǎng)姓名+聯(lián)系電話)

      第九周:5.微生物菌落的觀察;6.超凈工作臺(tái)的使用;7.微生物的分離純化;8.水中大腸菌群的檢測(cè);

      第十周:9.口腔微生物的染色觀察與顯微鏡油鏡的使用;

      第十一周:10.細(xì)菌的革蘭氏染色;11.放線菌裝片的制作及觀察; 第十二周:12.酵母菌裝片的制作及觀察; 13.霉菌裝片的制作及觀察; 第十三周:14.酸奶的制作

      第十四周:開放實(shí)驗(yàn)——目標(biāo)菌株鑒定及活性測(cè)定;

      第十五周:實(shí)驗(yàn)考核(無(wú)菌操作、制片觀察);各組匯報(bào)實(shí)驗(yàn)結(jié)果并提交實(shí)驗(yàn)項(xiàng)目總結(jié)報(bào)告,要求按照正式發(fā)表的科研論文進(jìn)行寫作。

      第三篇:微生物學(xué)實(shí)驗(yàn)

      細(xì)菌群體生長(zhǎng)表現(xiàn)為細(xì)胞數(shù)目的增加或細(xì)胞物質(zhì)的增加。測(cè)定細(xì)胞數(shù)目的方法有顯微鏡直接計(jì)數(shù)法(direct microscopic count)、平板菌落計(jì)數(shù)法(plate count)、光電比油法(turbidity estimation by spectrophotometer)、最大或然數(shù)法(most probable number MPN)以及膜過(guò)濾法(membrane filtration)等。測(cè)定細(xì)胞物質(zhì)的方法有細(xì)胞干重的測(cè)定,細(xì)胞某種成分如氮的含量、RNA和DNA的含量測(cè)定,代謝產(chǎn)物的測(cè)定等。總之,測(cè)定微生物生長(zhǎng)量的方法很多,各有優(yōu)缺點(diǎn),工作中應(yīng)根據(jù)具體情況要求加以選擇。本實(shí)驗(yàn)主要介紹生產(chǎn)、科研工作中比較常用的顯微鏡直接計(jì)數(shù)法、平板菌落計(jì)數(shù)法和光電比濁計(jì)數(shù)法。

      一 顯微鏡直接計(jì)數(shù)法

      (一)目的要求

      1.明確血細(xì)胞計(jì)數(shù)板計(jì)數(shù)的原理。

      2.掌握使用血細(xì)胞計(jì)數(shù)板進(jìn)行微生物計(jì)數(shù)的方法。

      (二)基本原理

      顯微鏡直接計(jì)數(shù)法是將小量待測(cè)樣品的懸浮液置于一種特別的具有確定面積和容積的載玻片上(又稱計(jì)菌器),于顯微鏡下直接計(jì)數(shù)的一種簡(jiǎn)便、快速、直觀的方法。目前國(guó)內(nèi)外常用的計(jì)菌器有:血細(xì)胞計(jì)數(shù)板、Peteroff-Hauser計(jì)菌器以及Hawksley計(jì)菌器等,它們都可用于酵母、細(xì)菌、霉菌孢子等懸液的計(jì)數(shù),基本原理相同。后兩種計(jì)菌器由于蓋上蓋玻片后,總?cè)莘e為0.02mm3,而且蓋玻片和載波片之間的距離只有0.02mm,因此可用油浸物鏡對(duì)細(xì)菌等較小的細(xì)胞進(jìn)行觀察和計(jì)數(shù)。除了用這些計(jì)菌器外,還有在顯微鏡下直接觀察涂片面積與視野面積之比的估算法,此法一般用于牛乳的細(xì)菌學(xué)檢查。顯微鏡直接計(jì)數(shù)法的優(yōu)點(diǎn)是直觀、快速、操作簡(jiǎn)單。但此法的缺點(diǎn)是所測(cè)得的結(jié)果通常是死菌體和活菌體的總和。目前已有一些方法可以克服這一缺點(diǎn),如結(jié)合活菌染色微室培養(yǎng)(短時(shí)間)以及加細(xì)胞分裂抑制劑等方法來(lái)達(dá)到只計(jì)數(shù)活菌體的目的。本實(shí)驗(yàn)以血球計(jì)數(shù)板為例進(jìn)行顯微鏡直接計(jì)數(shù)。另外兩種計(jì)菌器的使用方法可參看各廠商的說(shuō)明書。

      用血細(xì)胞計(jì)數(shù)板在顯微鏡下直接計(jì)數(shù)是一種常用的微生物計(jì)數(shù)方法。該計(jì)數(shù)板是一塊特制的載玻片,其上由四條槽構(gòu)成三個(gè)平臺(tái);中間較寬的平臺(tái)又被一短橫槽隔成兩半,每一邊的平臺(tái)上各列有一個(gè)方格網(wǎng),每個(gè)方格網(wǎng)共分為九個(gè)大方格,中間的大方格即為計(jì)數(shù)室。血細(xì)胞計(jì)數(shù)板構(gòu)造如圖l5-1。計(jì)數(shù)室的刻度一般有兩種規(guī)格,一種是一個(gè)大方格分成25個(gè)中方格,而每個(gè)中方格又分成16個(gè)小方格(圖15—2);另一種是一個(gè)大方格分成16個(gè)中方格,而每個(gè)中方格又分成25個(gè)小方格,但無(wú)論是哪一種規(guī)格的計(jì)數(shù)板,每一個(gè)大方格中的小方格都是400個(gè)。每一個(gè)大方格邊長(zhǎng)為lmm,則每一個(gè)大方格的面積為lmm2,蓋上蓋玻片后,蓋玻片與載玻片之間的高度為0.lmm,所以計(jì)數(shù)室的容積為0.lmm3(萬(wàn)分之一毫升)。

      圖15—1 血細(xì)胞計(jì)數(shù)板構(gòu)造

      (一)圖15—2 血細(xì)胞計(jì)數(shù)板構(gòu)造

      (二)A.正面圖;B.縱切面圖; 放大后的方格網(wǎng),中間大方格為計(jì)數(shù)室

      1.血細(xì)胞計(jì)數(shù)板;2.蓋玻片;3.計(jì)數(shù)室

      計(jì)數(shù)時(shí),通常數(shù)五個(gè)中方格的總菌數(shù),然后求得每個(gè)中方格的平均值,再乘上25或16,就得出一個(gè)大方格中的總菌數(shù),然后再換算成lml菌液中的總菌數(shù)。

      設(shè)五個(gè)中方格中的總菌數(shù)為A,菌液稀釋倍數(shù)為B,如果是25個(gè)中方格的計(jì)數(shù)板,則

      1mL菌液中的總菌數(shù)=A/5×25×104×B=50000A·B(個(gè))

      同理,如果是16個(gè)中方格的計(jì)數(shù)板,1mL菌液中的總菌數(shù)=A/5×16×104×B=32000A·B(個(gè))

      (三)器材

      1.菌種 釀酒酵母

      2.儀器或其他用具 血細(xì)胞計(jì)數(shù)板,顯微鏡,蓋玻片,無(wú)菌毛細(xì)滴管。

      (四)操作步驟

      l.菌懸液制備

      以無(wú)菌生理鹽水將釀酒酵母制成濃度適當(dāng)?shù)木鷳乙骸?/p>

      2.鏡檢計(jì)數(shù)室

      在加樣前,先對(duì)計(jì)數(shù)板的計(jì)數(shù)室進(jìn)行鏡檢。若有污物,則需清洗,吹干后才能進(jìn)行計(jì)數(shù)。

      3.加樣品

      將清潔干燥的血細(xì)胞計(jì)數(shù)板蓋上蓋玻片,再用無(wú)菌的毛細(xì)滴管將搖勻的釀酒酵母菌懸液由蓋玻片邊緣滴一小滴,讓菌液沿縫隙靠毛細(xì)滲透作用自動(dòng)進(jìn)入計(jì)數(shù)室,一般計(jì)數(shù)室均能充滿菌液。

      取樣時(shí)先要搖勻菌液;加樣時(shí)計(jì)數(shù)室不可有氣泡產(chǎn)生。

      4.顯微鏡計(jì)數(shù)

      加樣后靜止5min,然后將血細(xì)胞計(jì)數(shù)板置于顯微鏡載物臺(tái)上,先用低倍鏡找到計(jì)數(shù)室所在位置,然后換成高倍鏡進(jìn)行計(jì)數(shù)。

      調(diào)節(jié)顯微鏡光線的強(qiáng)弱適當(dāng),對(duì)于用反光鏡采光的顯微鏡還要注意光線不要偏向一邊,否則視野中不易舌清楚計(jì)數(shù)室方格線,或只見豎線或只見橫線。

      在計(jì)數(shù)前若發(fā)現(xiàn)菌液太濃或太稀,需重新調(diào)節(jié)稀釋度后再計(jì)數(shù)。一般樣品稀釋度要求每小格內(nèi)約有5~10個(gè)菌體為宜。每個(gè)計(jì)數(shù)室選5個(gè)中格(可選4個(gè)角和中央的一個(gè)中格)中的菌體進(jìn)行計(jì)數(shù)。位于格線上的菌體一般只數(shù)上方和右邊線上的。如遇酵母出芽,芽體大小達(dá)到母細(xì)胞的一半時(shí),即作為兩個(gè)菌體計(jì)數(shù)。計(jì)數(shù)一個(gè)樣品要從兩個(gè)計(jì)數(shù)室中計(jì)得的平均數(shù)值來(lái)計(jì)算樣品的含菌量。

      5.清洗血細(xì)胞計(jì)數(shù)板

      使用完畢后,將血細(xì)胞計(jì)數(shù)板在水龍頭用水沖洗干凈,切勿用硬物洗刷,洗完后自行晾干或用吹風(fēng)機(jī)吹干。鏡檢,觀察每小格內(nèi)是否有殘留菌體或其他沉淀物。若不干凈,則必須重復(fù)洗滌至干凈為止。

      (五)實(shí)驗(yàn)報(bào)告

      l.結(jié)果

      將結(jié)果記錄于下表中。A表示五個(gè)中方格中的總菌數(shù);B表示菌液稀釋倍數(shù)。

      各中格中菌數(shù)AB二室平均值菌數(shù)/ml

      12345

      第一室

      第二室

      2.思考題

      (1)根據(jù)你的體會(huì),說(shuō)明用血細(xì)胞計(jì)數(shù)板計(jì)數(shù)的誤差主要來(lái)自哪些方面?應(yīng)如何盡量減少誤差.力求準(zhǔn)確?

      (2)某單位要求知道一種干酵母粉中的活菌存活率,請(qǐng)?jiān)O(shè)計(jì)1~2種可行的檢測(cè)方法。

      二平板菌落計(jì)數(shù)法

      (一)目的要求

      學(xué)習(xí)習(xí)近平板菌落計(jì)數(shù)的基本原理和方法。

      (二)、基本原理

      平板菌落計(jì)數(shù)法是將待測(cè)樣品經(jīng)適當(dāng)稀釋之后,其中的微生物充分分散成單個(gè)細(xì)胞,取一定量的稀釋樣液接種到平板上,經(jīng)過(guò)培養(yǎng),由每個(gè)單細(xì)胞生長(zhǎng)繁殖而形成肉眼可見的菌落,即一個(gè)單菌落應(yīng)代表原樣品中的一個(gè)單細(xì)胞。統(tǒng)計(jì)菌落數(shù),根據(jù)其稀釋倍數(shù)和取樣接種量即可換算出樣品中的含菌數(shù)。但是,由于待測(cè)樣品往往不易完全分散成單個(gè)細(xì)胞,所以,長(zhǎng)成的一個(gè)單菌落也可來(lái)自樣品中的2~3或更多個(gè)細(xì)胞。因此平板菌落計(jì)數(shù)的結(jié)果往往偏低。為了清楚地闡述平板菌落計(jì)數(shù)的結(jié)果,現(xiàn)在已傾向使用菌落形成單位(colony-forming units,cfu)而不以絕對(duì)菌落數(shù)來(lái)表示樣品的活菌含量。

      平板菌落計(jì)數(shù)法雖然操作較繁,結(jié)果需要培養(yǎng)一段時(shí)間才能取得,而且測(cè)定結(jié)果易受多種因素的影響,但是,由于該計(jì)數(shù)方法的最大優(yōu)點(diǎn)是可以獲得活菌的信息,所以被廣泛用于生物制品檢驗(yàn)(如活菌制劑),以及食品、飲料和水(包括水源水)等的含菌指數(shù)或污染程度的檢測(cè)。

      (三)器材

      1.菌種 大腸桿菌菌懸液。

      2.培養(yǎng)基 牛肉膏蛋白陳培養(yǎng)基。

      3.儀器或其他用具lm1無(wú)菌吸管,無(wú)菌平皿,盛有4.5ml無(wú)菌水的試管,試管架,恒溫培養(yǎng)箱等。

      (四)操作步驟

      l.編號(hào)

      取無(wú)菌平皿9套,分別用記號(hào)筆標(biāo)明10-

      4、10-

      5、10-6。(稀釋度)各3套。另取6支盛有4.5mL無(wú)菌水的試管,依次標(biāo)是10-

      1、10-

      2、10-

      3、10-

      4、10-

      5、10-6。

      2.稀釋

      用lmL無(wú)菌吸管吸取lmL已充分混勻的大腸桿菌菌縣液(待測(cè)樣品),精確地放0.5ml至10-1的試管中,此即為10倍稀釋。將多余的菌液放回原菌液中。

      OptionsEmail Replies將10-1試管置試管振蕩器上振蕩,使菌液充分混勻。另取一支lml吸管插入10?1試管中來(lái)回吹吸菌懸液三次,進(jìn)一步將菌體分散、混勻。吹吸菌液時(shí)不要太猛太快,吸時(shí)吸管伸人管底,吹時(shí)離開液面,以免將吸管中的過(guò)濾棉花浸濕或使試管內(nèi)液體外溢。用此吸管吸取10-1菌液lmL,精確地放0.5mL至10-2試管中,此即為100倍稀釋?!溆嘁来晤愅?,整個(gè)過(guò)程如圖15-3所示。

      放菌液時(shí)吸管尖不要碰到液面,即每一支吸管只能接觸一個(gè)稀釋度的菌懸液,否則稀釋不精確,結(jié)果誤差較大。

      3,取樣

      用三支1mL無(wú)菌吸管分別吸取10-

      4、10-5和10-6。的稀釋菌懸液各lmL,對(duì)號(hào)放入編好號(hào)的無(wú)菌平皿中,每個(gè)平皿放0.2mL。

      不要用lmL吸管每次只靠吸管尖部吸0.2mL稀釋菌液放入平皿臼,這樣容易加大同一稀釋度幾個(gè)重復(fù)平板間的操作誤差。

      圖15—3平板菌落計(jì)數(shù)操作步驟

      4.倒平板.

      盡快向上述盛有不同稀釋度菌液的平皿中倒入融化后冷卻至45℃左右的牛肉膏蛋白胨培養(yǎng)基約15毫升/平皿,置水平位置迅速旋動(dòng)平皿,使培養(yǎng)基與菌液混合均勻,而又不使培養(yǎng)基蕩出平皿或?yàn)R到平皿蓋上。由于細(xì)菌易吸附到玻璃器皿表面,所以菌液加入到培養(yǎng)皿后,應(yīng)盡快倒入融化并于已冷卻至45℃左右的培養(yǎng)基,立即搖勻,否則細(xì)菌將不易分散或長(zhǎng)成的菌落連在一起,影響計(jì)數(shù)。

      待培養(yǎng)基凝固后,將平板倒置于37℃恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。

      5.計(jì)數(shù)

      培養(yǎng)48h后,取出培養(yǎng)平板,算出同一稀釋度三個(gè)平板上的菌落平均數(shù),并按下列公式進(jìn)行計(jì)算,每毫升中菌落形成單位(cfu)=同一稀釋度三次重復(fù)的平均菌落數(shù)×稀釋倍數(shù)×5

      一般選擇每個(gè)平板上長(zhǎng)有30~300個(gè)菌落的稀釋度計(jì)算每毫升的含菌量較為合適。同一稀釋度的三個(gè)重復(fù)對(duì)照的菌落數(shù)不應(yīng)相差很大,否則表示試驗(yàn)不精確。實(shí)際工作中同一稀釋度重復(fù)對(duì)照平板不能少于三個(gè),這樣便于數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì),減少誤差。由10-

      4、10-

      5、10-6三個(gè)稀釋度計(jì)算出的每毫升菌液中菌落形成單位數(shù)也不應(yīng)相差太大。

      平板菌落計(jì)數(shù)法,所選擇倒平板的稀釋度是很重要的。一般以三個(gè)連續(xù)稀釋度中的第二個(gè)稀釋度倒平板培養(yǎng)后所出現(xiàn)的平均菌落數(shù)在50個(gè)左右為好,否則要適當(dāng)增加或減少稀釋度加以調(diào)整。

      平板菌落計(jì)數(shù)法的操作除上述傾注倒平板的方式以外,還可以用涂布平板的方式進(jìn)行。二者操作基本相同,所不同的是后者先將牛肉膏蛋白胨培養(yǎng)基融化后倒平板,待凝固后編號(hào),并于37℃左右的溫箱中烘烤30min,或在超靜工作臺(tái)上適當(dāng)吹干,然后用無(wú)菌吸管吸取稀釋好的菌液對(duì)號(hào)接種于不同稀釋度編號(hào)的平板上,并盡快用無(wú)菌玻璃涂棒將菌液在平板上涂布均勻,平放于實(shí)驗(yàn)臺(tái)上20~30min,使菌液滲入培養(yǎng)基表層內(nèi),然后倒置37℃的恒溫箱中培養(yǎng)24~48h。

      涂布平板用的菌懸液量一般以0.1ml較為適宜,如果過(guò)少菌液不易涂布開,過(guò)多則在涂布完后或在培養(yǎng)時(shí)菌液仍會(huì)在平板表面流動(dòng),不易形成單菌落。

      五、實(shí)驗(yàn)報(bào)告

      1.結(jié)果

      2.將培養(yǎng)后菌落計(jì)數(shù)結(jié)果填入下表

      稀釋度10-410-510-6

      Cfu數(shù)/平板123平均123平均123平均

      每毫升中的cfu

      2.思考題

      (1)為什么融化后的培養(yǎng)基要冷卻至45℃左右才能倒平板?

      (2)要使平板菌落計(jì)數(shù)準(zhǔn)確,需要掌握哪幾個(gè)關(guān)鍵?為什么?

      (3)試比較平板菌落計(jì)數(shù)法和顯微鏡下直接計(jì)數(shù)法的優(yōu)缺點(diǎn)及應(yīng)用。

      (4)當(dāng)你的平板上長(zhǎng)出的菌落不是均勻分散的而是集中在一起時(shí),你認(rèn)為問(wèn)題出在哪里?

      (5)用倒平板法和涂布法計(jì)數(shù),其平板上長(zhǎng)出的菌落有何不同?為什么要培養(yǎng)較長(zhǎng)時(shí)間(48h)后觀察結(jié)果?

      三 光電比濁計(jì)數(shù)法

      一、目的要求

      1.了解光電比濁計(jì)數(shù)法的原理。

      2.學(xué)習(xí)、掌握光電比濁計(jì)數(shù)法的操作方法。

      二、基本原理

      當(dāng)光線通過(guò)微生物菌懸液時(shí),由于菌體的散射及吸收作用使光線的透過(guò)量降低。在一定的范圍內(nèi),微生物細(xì)胞濃度與透光度成反比,與光密度成正比,而光密度或透光度可以由光電池精確測(cè)出(圖15-4)。因此,可用一系列已知菌數(shù)的菌懸液測(cè)定光密度,作出光密度—菌數(shù)標(biāo)準(zhǔn)曲線。然后,以樣品液所測(cè)得的光密度,從標(biāo)準(zhǔn)曲線中查出對(duì)應(yīng)的菌數(shù)。制作標(biāo)準(zhǔn)曲線時(shí),菌體計(jì)數(shù)可采用血細(xì)胞計(jì)數(shù)板計(jì)數(shù),平板菌落計(jì)數(shù)或細(xì)胞干重測(cè)定等方法。本實(shí)驗(yàn)采用血細(xì)胞計(jì)數(shù)板計(jì)數(shù)。

      光電比濁計(jì)數(shù)法的優(yōu)點(diǎn)是簡(jiǎn)便、迅速,可以連續(xù)測(cè)定,適合于自動(dòng)控制。但是,由于光密度或透光度除了受菌體濃度影響之外,還受細(xì)胞大小、形態(tài)、培養(yǎng)液成分以及所采用的光波長(zhǎng)等因素的影響。因此,對(duì)于不同微生物的菌懸液進(jìn)行光電比濁計(jì)數(shù)應(yīng)采用相同的菌株和培養(yǎng)條件制作標(biāo)準(zhǔn)曲線。光波的選擇通常在400~700nm之間,具體到某種微生物采用多少還需要經(jīng)過(guò)最大吸收波長(zhǎng)以及穩(wěn)定性試驗(yàn)來(lái)確定。另外,對(duì)于顏色太深的樣品或在樣品中還含有其他干擾物質(zhì)的懸液不適合用此法進(jìn)行測(cè)定。

      圖15—4 比濁法測(cè)定細(xì)胞濃度的原理

      (三)器材

      1.菌種 釀酒酵母培養(yǎng)液

      2.儀器或其他用具 721型分光光度計(jì),血細(xì)胞計(jì)數(shù)板,顯微鏡,試管,吸水紙,無(wú)菌吸管,無(wú)菌生理鹽水等。

      (四)操作步驟

      1.標(biāo)準(zhǔn)曲線制作

      (1)編號(hào) 取無(wú)菌試管7支,分別用記號(hào)筆將試管編號(hào)為1、2、3、4、5、6、7。

      (2)調(diào)整菌液濃度 用血細(xì)胞計(jì)數(shù)板計(jì)數(shù)培養(yǎng)24小時(shí)的釀酒酵母菌懸液,并用無(wú)菌生理鹽水分別稀釋調(diào)整為每毫升1×106、2×106、4×106、6×106、8×106、10×106、12×106含菌數(shù)的細(xì)胞懸液。再分別裝入已編好號(hào)的1至7號(hào)無(wú)菌試管中。

      (3)測(cè)OD值 將1至7號(hào)不同濃度的菌懸液搖均勻后于560nm波長(zhǎng)、1cm比色皿中測(cè)定OD值。比色測(cè)定時(shí),用無(wú)菌生理鹽水作空白對(duì)照,并將OD值填入下表

      管號(hào)12345678

      細(xì)胞數(shù)106/ml

      光密度(OD)

      每管菌懸液在測(cè)定OD值時(shí)均必須先搖勻后再倒入比色皿中測(cè)定

      (4)以光密度(OD)值為縱坐標(biāo),以每毫升細(xì)胞數(shù)為橫坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。

      2.樣品測(cè)定

      將待測(cè)樣品用無(wú)菌生理鹽水適當(dāng)稀釋,搖均勻后,用560nm波長(zhǎng)、lcm比色皿測(cè)定光密度。測(cè)定時(shí)用無(wú)菌生理鹽水作空白對(duì)照。

      各種操作條件必須與制作標(biāo)準(zhǔn)曲線時(shí)的相同,否則,測(cè)得值所換算的含菌數(shù)就不準(zhǔn)確。

      3.根據(jù)所測(cè)得的光密度值,從標(biāo)準(zhǔn)曲線查得每毫升的含菌數(shù)。

      (五)實(shí)驗(yàn)報(bào)告

      l.結(jié)果

      每毫升樣品原液菌數(shù)=從標(biāo)準(zhǔn)曲線查得每毫升的菌數(shù)×稀釋倍數(shù)

      2.思考題

      (1)光電比濁計(jì)數(shù)的原理是什么?這種計(jì)數(shù)法有何優(yōu)缺點(diǎn)?

      (2)光電比濁計(jì)數(shù)在生產(chǎn)實(shí)踐中有何應(yīng)用價(jià)值?

      (3)本實(shí)驗(yàn)為什么采用560nm波長(zhǎng)測(cè)定酵母菌懸液的光密度?如果你在實(shí)驗(yàn)中需要測(cè)定大腸桿菌生長(zhǎng)的OD值,你將如何選擇波長(zhǎng)?

      四 大腸桿菌生長(zhǎng)曲線的測(cè)定

      (一)目的要求

      1.通過(guò)細(xì)菌數(shù)量的測(cè)量了解大腸桿菌的生物特征和規(guī)律,繪制生長(zhǎng)線。

      2.復(fù)習(xí)光電比濁法測(cè)量細(xì)菌數(shù)量的方法。

      (二)基本原理

      大多數(shù)細(xì)菌的繁殖速率很快,在合適的條件下,一定時(shí)期的大腸桿菌細(xì)胞每20min分裂一次。將一定量的細(xì)菌轉(zhuǎn)入新鮮液體培養(yǎng)基中,在適宜的條件下培養(yǎng)細(xì)胞要經(jīng)歷延遲期,對(duì)數(shù)期、穩(wěn)定期和衰亡期四個(gè)階段。以培養(yǎng)時(shí)間為橫坐標(biāo),以細(xì)菌數(shù)目的對(duì)數(shù)或生長(zhǎng)速率為縱坐標(biāo)作圖所繪制的曲線稱為該細(xì)菌的生長(zhǎng)曲線。不同的細(xì)菌在相同的培養(yǎng)條件下其生長(zhǎng)曲線不同,同樣的細(xì)菌在不同的培養(yǎng)條件下所繪制的生長(zhǎng)曲線也不相同。測(cè)定細(xì)菌的生長(zhǎng)曲線,了解其生長(zhǎng)繁殖規(guī)律,這對(duì)人們根據(jù)不同的需要,有效地利用和控制細(xì)菌的生長(zhǎng)具有重要意義。

      用于測(cè)定細(xì)菌細(xì)胞數(shù)量的方法已在上述實(shí)驗(yàn)作了介紹。本實(shí)驗(yàn)用分光光度計(jì)(spectrophotometer)進(jìn)行光電比濁測(cè)定不同培養(yǎng)時(shí)間細(xì)菌懸浮液的OD值,繪制生長(zhǎng)曲線。也可以直接用試管或帶有測(cè)定管的三角瓶(圖15-5)測(cè)定“klett units”值的光度計(jì)。如圖15—6所示,只要接種1支試管或1個(gè)帶測(cè)定管的三角瓶,在不同的培養(yǎng)時(shí)間(橫坐標(biāo))取樣測(cè)定,以測(cè)得的klett units為縱坐標(biāo),便可很方便地繪制出細(xì)菌的生長(zhǎng)曲線。如果需要,可根據(jù)公式1 klett units=OD/0.002換算出所測(cè)菌懸液的OD值。

      圖15—5 帶側(cè)臂試管的三角燒瓶

      (三)器材

      1.菌種 大腸桿菌

      2.培養(yǎng)基 LB液體培養(yǎng)基70ml,分裝2支大試管(5ml/支),剩余60ml裝入250ml的三角瓶。

      3.儀器或其他用具 722型分光光度計(jì),水浴振蕩搖床,無(wú)菌試管,無(wú)菌吸管等。

      圖15—6 直接用試管測(cè)OD值

      (四)操作步驟

      1.標(biāo)記

      取11支無(wú)菌大試管,用記號(hào)筆分別標(biāo)明培養(yǎng)時(shí)間,即0、1.5、3、4、6、8、10、12、14、16和20h。

      2.接種

      分別用5ml無(wú)菌吸管吸取2.5ml大腸桿菌過(guò)夜培養(yǎng)液(培養(yǎng)10~12h)轉(zhuǎn)入盛有50ml LB液的三角瓶?jī)?nèi),混合均勻后分別取5ml混合液放入上述標(biāo)記的11支無(wú)菌大試管中。

      3.培養(yǎng)

      將已接種的試管置搖床37℃振蕩培養(yǎng)(振蕩頻率250r/min),分別培養(yǎng)0、1.5、3、4、6、8、10、12、14、16和20h,將標(biāo)有相應(yīng)時(shí)間的試管取出,立即放冰箱中貯存,最后一同比濁測(cè)定其光密度值。

      4.比濁測(cè)定

      用未接種的LB液體培養(yǎng)基作空白對(duì)照,選用600nm波長(zhǎng)進(jìn)行光電比濁測(cè)定。從早取出的培養(yǎng)液開始依次測(cè)定,對(duì)細(xì)胞密度大的培養(yǎng)液用LB液體培養(yǎng)基適當(dāng)稀釋后測(cè)定,使其光密度值在0.1~0.65之內(nèi)(測(cè)定OD值前,將待測(cè)定的培養(yǎng)液振蕩,使細(xì)胞均勻分布)。

      本操作步驟也可用簡(jiǎn)便的方法代替:

      1.用1ml無(wú)菌吸管取0.25ml大腸桿菌過(guò)夜培養(yǎng)液轉(zhuǎn)入盛有3~5ml LB液的試管中、混勻后將試管直接插入分光光度計(jì)的比色糟中,比色糟上方用自制的暗盒將試管及比色暗室全部罩上,形成一個(gè)大的暗環(huán)境,另以1支盛有LB液但沒有接種的試管調(diào)零點(diǎn),測(cè)定樣品中培養(yǎng)0h的OD值。測(cè)定完畢后,取出試管置37℃繼續(xù)振蕩培養(yǎng)。

      2.分別在培養(yǎng)0、1.5、3、4、6、8、10、12、14、16和20h,取出培養(yǎng)物試管按上述方法測(cè)定OD值。該方法準(zhǔn)確度高、操作簡(jiǎn)便。但須注意的是使用的2支試管要很干凈,其透光程度愈接近,測(cè)定的準(zhǔn)確度愈高。

      (五)實(shí)驗(yàn)報(bào)告

      1.結(jié)果

      (1)將測(cè)定的OD600值填入下表:

      培養(yǎng)時(shí)間對(duì)照 0 1.5 3 4 6 8 10 12 14 16 20

      光密度值OD600

      (2)繪制大腸桿菌的生長(zhǎng)曲線。

      2.思考題

      (1)如果用活菌計(jì)數(shù)法制作生長(zhǎng)曲線,你認(rèn)為會(huì)有什么不同??jī)烧吒饔惺裁磧?yōu)缺點(diǎn)?

      (2)細(xì)菌生長(zhǎng)繁殖所經(jīng)歷的四個(gè)時(shí)期中,哪個(gè)時(shí)期其代時(shí)最短?若細(xì)胞密度為103/ml,培養(yǎng)4.5h后,其密度高達(dá)2×108/ml,計(jì)計(jì)算出其代時(shí)。

      (3)次生代謝產(chǎn)物的大量積累在哪個(gè)時(shí)期?根據(jù)細(xì)菌生長(zhǎng)繁殖的規(guī)律,采用哪些措施可使次生代謝產(chǎn)物積累更多?

      評(píng)論這張

      第四篇:微生物學(xué)實(shí)驗(yàn)?zāi)康膬?nèi)容與要求

      一、微生物學(xué)實(shí)驗(yàn)內(nèi)容與目的微生物學(xué)實(shí)驗(yàn)內(nèi)容包括:培養(yǎng)基的制備及滅菌;從土壤中分離和純化微生物;細(xì)菌染色及形態(tài)觀察;放線菌、酵母菌和霉菌形態(tài)觀察;微生物顯微計(jì)數(shù)和大小測(cè)量;E.coli生長(zhǎng)曲線的測(cè)定;細(xì)菌的生理生化反應(yīng);環(huán)境因素對(duì)微生物生長(zhǎng)的影響;微生物的誘變育種;產(chǎn)淀粉酶菌株的分離純化;水和飲料中細(xì)菌學(xué)檢查;食用真菌的采集、分離和培養(yǎng);抗藥性突變株的篩選。

      微生物學(xué)實(shí)驗(yàn)課的目的在于通過(guò)一系列實(shí)驗(yàn)項(xiàng)目,使學(xué)生能比較熟練地掌握微生物學(xué)實(shí)驗(yàn)的操作方法和技能;學(xué)會(huì)進(jìn)行綜合實(shí)驗(yàn)的設(shè)計(jì)、準(zhǔn)備、操作和結(jié)果分析;培養(yǎng)學(xué)生對(duì)實(shí)驗(yàn)原理、方法和結(jié)果的正確理解,仔細(xì)觀察,認(rèn)真思考的科學(xué)素養(yǎng)和分析問(wèn)題和解決問(wèn)題的科學(xué)能力。

      二、微生物學(xué)實(shí)驗(yàn)室要求與安全

      為了確保微生物學(xué)實(shí)驗(yàn)課質(zhì)量,提高實(shí)驗(yàn)效果,并保證實(shí)驗(yàn)室的安全,特提出如下要求,希望共同遵守。

      (1)實(shí)驗(yàn)前須預(yù)習(xí)實(shí)驗(yàn)內(nèi)容,了解實(shí)驗(yàn)?zāi)康?、方法和注意事?xiàng),寫出實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)方案。在課堂上注意聆聽老師對(duì)實(shí)驗(yàn)內(nèi)容的講解,注意觀察教師的示范操作,以掌握實(shí)驗(yàn)操作的要領(lǐng)。

      (2)進(jìn)入實(shí)驗(yàn)室必須穿工作服,必要時(shí)還須戴口罩、帽子和手套,并做好實(shí)驗(yàn)前的各項(xiàng)準(zhǔn)備工作。

      (3)非必需物品禁止帶入實(shí)驗(yàn)室,帶入實(shí)驗(yàn)室的物品應(yīng)遠(yuǎn)離操作區(qū),放在指定的區(qū)域。

      (4)實(shí)驗(yàn)室內(nèi)不準(zhǔn)大聲喧嘩、嬉戲,應(yīng)保持實(shí)驗(yàn)室的安靜、整潔和有序。不準(zhǔn)在實(shí)驗(yàn)室內(nèi)吸煙、飲水和進(jìn)食,盡量避免用手觸摸頭、面部,防止感染,盡量減少室內(nèi)活動(dòng),以免引起風(fēng)動(dòng)。

      (5)實(shí)驗(yàn)中注意正確使用試劑,按操作規(guī)程使用儀器,遇到儀器故障時(shí)請(qǐng)老師幫助解決,切勿擅自折卸,否則因此而損壞儀器,應(yīng)予以賠償。

      (6)用過(guò)的污染物品應(yīng)放到指定的地點(diǎn),經(jīng)專人消毒滅菌之后再進(jìn)行清洗,切勿亂丟或沖入水池中。禁止將本實(shí)驗(yàn)室的物品帶出實(shí)驗(yàn)室外。需送溫箱培養(yǎng)的物品,應(yīng)標(biāo)記好材料名稱、姓名、日期后送到指定位置。

      (7)實(shí)驗(yàn)過(guò)程中,切勿使用乙醇、乙醚、丙酮等易燃藥品接近火焰。如遇火險(xiǎn),應(yīng)關(guān)閉電源,用濕布阻燃滅火,必要時(shí)使用滅火器。

      (8)實(shí)驗(yàn)完畢后應(yīng)將桌面整理清潔,試劑、儀器放回原處,并將操作臺(tái)擦

      拭干凈,打掃衛(wèi)生,關(guān)好水、電、門窗。

      (9)離室前脫下工作服,反折放在指定的地方;雙手在2%來(lái)蘇液中浸泡5min左右,再用肥皂、清水洗凈,方可離開實(shí)驗(yàn)室。

      第五篇:微生物學(xué)實(shí)驗(yàn)考試題

      《微生物學(xué)實(shí)驗(yàn)》試題

      1、在進(jìn)行高壓蒸汽滅菌時(shí),是否只要滅菌鍋壓力表到達(dá)所需的值時(shí)鍋內(nèi)就能獲得所需的滅菌溫度?為什么?

      2、在手提式高壓滅菌鍋的蓋上有哪些部件?它們各起什么作用?

      3、高壓蒸汽滅菌鍋的操作有哪幾個(gè)步驟?每一步驟應(yīng)注意哪些問(wèn)題?

      4、在微生物學(xué)實(shí)驗(yàn)中,常用于配制固體培養(yǎng)基的凝固劑是什么?它有哪些特性?如何使用?

      5、環(huán)境樣品梯度稀釋、涂布平板法分離微生物時(shí),如何選擇不同稀釋梯度樣品的涂布順序?為什么?

      6、在革蘭氏染色實(shí)驗(yàn)中,為什么會(huì)出現(xiàn)假陽(yáng)性和假陰性?如何避免?

      7、在革蘭氏染色實(shí)驗(yàn)中,不經(jīng)復(fù)染這一步,能否區(qū)別革蘭氏陽(yáng)性細(xì)菌和革蘭氏陰性細(xì)菌?為什么?

      8、為何用計(jì)數(shù)板可以計(jì)得樣品中的總菌值?如何計(jì)算樣品中的菌體濃度?

      9、血球計(jì)數(shù)板計(jì)數(shù)時(shí),計(jì)數(shù)室內(nèi)如有氣泡會(huì)對(duì)結(jié)果產(chǎn)生怎樣的影響?如何避免產(chǎn)生氣泡?

      10、試分析血球計(jì)數(shù)板計(jì)數(shù)法的誤差來(lái)源,并提出減少誤差的方法和措施。

      要求把題目和答案寫在實(shí)驗(yàn)報(bào)告紙上,統(tǒng)一收齊后和第一次實(shí)驗(yàn)報(bào)告一起送到我辦公室-生科樓104。

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