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      血清γ-球蛋白的分離純化實(shí)驗(yàn)報(bào)告

      2019-09-16 15:04:09下載本文作者:會(huì)員上傳
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      血清γ-球蛋白的分離純化

      一、目的與要求

      1、掌握分離純化蛋白質(zhì)的基本原理和基本過(guò)程。

      2、熟悉鹽析、離心、層析、電泳等生化基本技術(shù)在蛋白質(zhì)分離純化中的綜合應(yīng)用。

      3、學(xué)會(huì)設(shè)計(jì)和制定分離純化蛋白質(zhì)的實(shí)驗(yàn)方案,技術(shù)路線,質(zhì)量監(jiān)控和保證措施。

      二、實(shí)驗(yàn)原理

      血清蛋白有300多種,可粗略的分為清、球蛋白兩大類,γ球蛋白只是球蛋白中的一個(gè)亞類。欲用常規(guī)方法獲得,可先用半飽和硫酸銨從血清中鹽析出球蛋白,接著用葡萄糖凝膠G-25脫去球蛋白中的鹽分最后用DEAE纖維素陰離子交換柱便可直接從脫鹽的球蛋白溶液中分離純化出γ球蛋白,其反應(yīng)機(jī)理如下:

      C2H5

      H

      纖維素-O-(CH2)2-N(C2H5)2

      纖維素-O-(CH2)2-N+……H2PO4

      H++H2PO4

      DEAE纖維素離子交換柱

      COOH

      C2H5

      α、β、γ球蛋白

      NH2

      COO

      H

      經(jīng)過(guò)鹽析和脫鹽的球蛋白液

      纖維素-O-(CH2)2-N+…α和β

      G

      PH6.3

      NH2

      交換到柱上的α和β-球蛋白

      H2PO4

      COOH

      γ-球蛋白

      NH3+

      被DEAE柱分離純化的γ-球蛋白

      被柱層析交換結(jié)合的α球蛋白和β球蛋白,可通過(guò)增加洗脫液的離子強(qiáng)度或降低洗脫的pH值(也可兩者同時(shí)改變),使其分部洗脫下來(lái)而被純化。純化前后的γ球蛋白可用電泳方法進(jìn)行比較鑒定。

      三、儀器和材料

      儀器:離心機(jī),1.5×40cm層析柱,層析架或滴定臺(tái),核酸-蛋白檢測(cè)儀,部分收集器,紫外分光光度計(jì),色譜柱,電泳槽,電泳儀。

      材料:馬血清,Sephadex

      G-25×200g,DEAE-32×200g。

      四、實(shí)驗(yàn)步驟

      (一)分離純化步驟

      1、取3mL,4℃預(yù)冷血清,加入3mL

      4℃預(yù)冷的飽和硫酸銨。邊滴邊搖。

      2、靜置大于10min后,3500rpm離心15min,棄去上清液,將沉淀溶于少量的生理鹽水。從中取0.5mL用于測(cè)定蛋白質(zhì)含量。

      3、將剩余的樣品上Sephadex

      G-25柱,用0.02

      mol/L

      pH6.5的NH4AC緩沖液洗脫,每管收集3

      mL,用于繪制洗脫曲線,選擇顏色最深(即濃度最高管)的取0.5mL留待電泳用。

      4、將剩余的蛋白質(zhì)溶液上已平衡好的DEAE-32柱(裝一半的柱子),用0.02

      mol/L

      pH6.5

      NH4AC緩沖液洗脫,用干凈的試管收集,并用20%磺基水楊酸檢測(cè)是否有蛋白流出,并繪制洗脫曲線,收集的蛋白質(zhì)溶液即為γ球蛋白(留少量電泳用,0.5ml測(cè)[Pr])。

      5、柱子再生。先用0.3mol/L高鹽緩沖液,再用0.02mol/L緩沖液平衡。

      (二)電泳步驟

      1、安裝垂直板電泳槽,按表配制分離膠溶液。用滴管吸取分離膠溶液,沿管壁注入玻璃板至距上端3cm處(插梳為準(zhǔn))

      2、立即用滴管沿凝膠管壁加人蒸餾水約0.5cm高度,加水時(shí)應(yīng)注意減少膠液表面的震動(dòng)與擴(kuò)散。加蒸餾水的目的,隔離空氣中的氧和消除凝膠柱表面的彎月面,使凝膠表面平坦(加水時(shí)切勿呈滴狀滴入膠液)。

      3、靜置30分鐘,在凝膠表面與水之間出現(xiàn)清晰的界面,表示聚合已完成(注:剛加水時(shí)看出有界面,后逐漸消失,等再看出清晰界面時(shí),表明凝膠已聚合)。用滴管吸去凝膠管的水層,并用濾紙條(無(wú)毛邊)輕輕吸去凝膠表面殘留的水分,注意不要損傷已聚合的凝膠表面。

      4、按表制備濃縮膠,沿管壁加入濃縮膠,插上梳子,靜置15分鐘,待凝膠聚合后,待用。

      5、加入10倍稀釋的甘氨酸一Tris緩沖溶液于電泳槽中,用注射針排除樣品孔中的氣泡,樣品與樣品處理液1:1混合后,用微量注射器上樣。

      6、將上電泳槽的電極接至電泳儀的負(fù)極,下電泳槽的電極接至電泳儀的正極,接通電源,剛開(kāi)始5分鐘內(nèi)6-7

      mA/板,待示蹤染料遷移到下口約0.5cm處時(shí),就可停止電泳,切斷電源(電泳時(shí)間約為

      2/小時(shí)左右)。

      7、剝膠

      取下玻璃板,用帶有10cm長(zhǎng)的注射針頭,內(nèi)盛蒸餾水作潤(rùn)滑劑。將針頭插人膠與玻璃板之間,邊注水邊慢慢推針前進(jìn),靠水流壓力和潤(rùn)滑作用使玻璃板與凝膠分開(kāi)。

      8、固定,染色與脫色

      固定染色液染色過(guò)夜,用脫色液脫色.9、染色,加入染色液,染色過(guò)夜。

      10、拍照,記錄結(jié)果。

      五、實(shí)驗(yàn)結(jié)果與分析

      **

      血清樣由于蛋白質(zhì)種類較多,區(qū)帶不清。脫鹽后,樣品中剩余蛋白質(zhì)為α、β、γ-球蛋白,從結(jié)果中可以看到幾條較為明顯的區(qū)帶。γ-球蛋白的電泳結(jié)果顯示其分離的較為純凈。

      六、注意事項(xiàng)

      1、上樣前要將使用過(guò)的柱子重生。

      2、上樣時(shí)要注意3個(gè)相切:緩沖液與柱床表面相切;樣品與柱床表面相切;洗樣時(shí)緩

      沖液與柱床表面相切。

      3、用瓊脂糖封膠時(shí)一定要封延時(shí),防止漏膠。

      4、配膠時(shí)要按照順序加樣,配完后要立刻混勻。

      5、剝膠時(shí)要在水沖洗的情況下進(jìn)行。

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